авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ БИБЛИОТЕКА РОССИИ

КОНФЕРЕНЦИИ, КНИГИ, ПОСОБИЯ, НАУЧНЫЕ ИЗДАНИЯ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ


Pages:     | 1 | 2 ||

«УКРАИНСКАЯ АКАДЕМИЯ АГРАРНЫХ НАУК СЕЛЕКЦИОННО-ГЕНЕТИЧЕСКИЙ ИНСТИТУТ на правах рукописи КАЛЕНДАРЬ РУСЛАН НИКОЛАЕВИЧ ...»

-- [ Страница 3 ] --

Необходимо отметить, что год 1995-й был влажным и наиболее благоприятным для ячменя, год же 1994-й был засушливый и привёл к резкому снижению урожая и падению уровня проявления агрономических показателей. Так например, продуктивность в 1995 году составила около 9.5, то 1994 - 3.5;

число зерен на растении в 1995 году насчитывало до 220, а в 1994 - 90. Аналогичная ситуация прослеживается и для других показателей: массе зерен, кустистости, озерненности, проростаемости (Табл.11).

Таким образом, представляется вероятным наличие многолокусного типа наследования таких количественных показателей как продуктивность, озерненность и число зерен на одном растении, тогда как для показателей массы 1000 зерен и кустистость вероятнее характерен однолокусный тип наследования.

Локусы первой группы признаков были отнесены к четвертой группе сцепления с маркером Р66#2300 и к третьей группе сцепления - с маркерами P69#1050, P39# и P44#560. Локусы второй группы признаков ассоциируют только с маркером P66#2300, причем проявление этих признаков зависит от влияния окружающей среды.

Проблема взаимоотношения генома с окружающей средой является важной в генетике количественных признаков. Для решения проблемы используется анализ исследуемой популяции в различных географических зонах интервальным методом (IM), базирующийся на использовании остаточной ошибки (Lander et al., 1989).

Таблица Результаты статистического анализа популяции №106 (F7-8, Одесский 115/ Гольф) за 1994 и 1995 года Количественный Маркер Средняя число Оценка показатель величина для особей разности аллеля средних Продуктивность P39#1050 61 t=2.188** 0 9.19с0. (1995 г.) 64 F=1. 1 9.98с0. P52#700 40 t=2.057* 0 3.47с0. (1994 г.) 40 F=2.182** 1 3.96с0. P57#1000 42 t=2.956*** 0 3.42с0. (1994 г.) 47 F=1. 1 4.07с0. Озерненность P6#900 61 t=2.305* 0 11.56с0. (1994 г.) 49 F=1.535* 1 10.17с0. P9#680 65 t=2.066* 0 11.64с0. (1994 г.) 52 F=1.576 * 1 10.39с0. P69#1050 50 t=2.113* 0 11.77с0. (1994 г.) 56 F=1.744* 1 10.43с0. P52#700 57 t=2.057* 0 17.79с0. (1995 г.) 71 F=2.182* 1 18.94с0. P44#560 72 t=2.43** 0 18.79с0. (1995 г.) 70 F=1. 1 17.56с0. P66#2320 57 t=2.473** 0 40.39с0. (1994 г.) 60 F=1. 1 39.54с0. продолжение таблицы Количественный Маркер Средняя число Оценка показатель величина для особей разности аллеля средних P2#604 62 t=2.465** 0 95.9с4. Число зерен на 1 (1994 г.) 54 F=1. 1 81.33с4. растении P69#1050 65 t=2.317 ** 0 224.2с5. (1995 г.) 66 F=1.585 * 1 243.9с6. P39#2300 76 t=2.803** 0 223.6с5. (1995 г.) 62 F=1. 1 246.3с6. P57#1000 54 t=2.852** 0 80.11с3. (1994 г.) 60 F=1.549* 1 96.90с4. Масса 1000 зерен P39#1188 60 t=2.567** 0 39.37с0. (1995 г.) 62 F=1.495* 1 40.60с0. P2#1300 46 t=2.407** 0 40.74с 0. (1995 г.) 63 F=2.002** 1 39.33с0. P2#604 72 t=2.497** 0 40.54с0. (1995 г.) 68 F=1.556* 1 39.47с0. Кустистость P63#700 60 t=2.044* 0 7.36с0. (1994 г.) 80 F=1. 1 8.08с0. P66#2320 66 t=2.405* 0 8.21с0. (1994 г.) 74 F=1. 1 7.38с0. * - P0.05;

** - P0.01.

Таким путем пошли участники северо-американского проекта по картированию генома ячменя: 26 лабораторий из Канады, США и стран Европы анализируют одну и туже комбинацию в разных условиях. Суммарная информация анализируется и составляется полное представление по локализации локусов количественных признаков (NABGMP, 1993). Это сложный путь, приносящий плоды.

Jansen et al., (1995) предложили новый метод анализа локализации локусов QTLs на основе модели множественного QTL (multiple-QTL models - MQM). Авторы использовали Arabidopsis thaliana как модельный организм, с небольшим геномом, с коротким периодом вегетации и простотой при размножении. Анализировали две популяции Arabidopsis thaliana, различающихся по времени цветения - Колумбийскую (Col) и Landsberg erecta (Ler), а также рекомбинантные имбредные линии (RIL) от скрещивания Col на Ler. Время цветения сильно зависит от факторов окружающей среды, среди которых наиболее важные фотопериод и температура. Поэтому проверка данного метода проходилась в шести повторностях при различных условиях выращивания. Короткий день (SD) (10 часов освещения), длинный день (LD) (16 часов освещения), постоянное освещение (CL), короткий день плюс яровизация (SDV), длинный день и яровизация (LDV), продолжительное освещение с яровизацией (CLV).

Среди 12 QTLs, найденных авторами с помощью метода MQM, четыре показали зависимость от взаимодействия с окружающей средой.

Таким образом, проблема локализации QTLs при сильном влиянии окружающей среды является до сих пор открытой. Решение данной проблемы, возможно при длительном наблюдении за объектом, при наличии “плотной” генетической карты, а идентификацию локуса количественного признака необходимо осуществлять c помощью метода MQM.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ Генетико-селекционные исследования обогатились новым эффективным методом анализа молекулярно-генетического полиморфизма. В данной работе показано, что полимеразная цепная реакция с произвольными праймерами (RAPD) является удобным методом в исследовании молекулярно-генетического полиморфизма ячменя. Быстрота и высокая эффективность метода, RAPD существенно расширяет возможности использования молекулярного полиморфизма в генетике и селекции растений.

Для применения RAPD в генетических исследованиях сельскохозяйственных растений, необходимо было провести изучение особенности этой реакции и подобрать необходимые параметры. Для оптимизации RAPD-анализа проведено моделирование ПЦР с произвольными праймерами. На основании изученной модели показана динамика образования продукта амплификации. Установлено, что в первых двух циклах реакции не происходит образование истинного продукта реакции, поэтому температуру отжига в первых циклах надо устанавливать несколько ниже оптимальной. Для вычисления оптимальной температуры отжига необходимо иметь значения температуры плавления продукта реакции и температуры плавления праймера.

Предложена эмпирическая формула, с помощью которой определяется значения температуры плавления праймера. Последняя основывается на термодинамическом параметре dG (свободная энергия Гиббса), изменение которого осуществляется согласно непрерывному закону, что более конкретно для определения истинной температуры плавления олигонуклеотида.

Создана компьютерная программа подбора оптимальных условий ПЦР в зависимости от размера и структуры праймера. Для всех используемых в работе праймеров определено значение температур плавления и конечное значение температуры отжига ПЦР. При определении температуры плавления продукта реакции исходили из того, что размеры амплифицированных продуктов находятся в пределах 200-2000 пар оснований, с ГЦ-составом 50%.

Подобрана концентрация некоторых важных компонентов реакционной смеси:

ионов магния и полиэтиленгликоля 6000, усиливающих специфичность реакции. С учетом всех модификаций условий реакции показана количественная и качественная стабильность и воспроизводимость продуктов амплификации ДНК.

Проведен анализ различных уровней специфичности праймеров. Праймеры классифицированы на видоспецифические и внутривидоспецифические (сортоспецифичные). Полиморфные полосы, детектированые с помощью ПЦР с произвольными праймерами, в межвидовом анализе составили 80%, в то время как внутри вида H.vulgare - 50%. Некоторые праймеры, не проявляющие внутривидовой полиморфизм у H.vulgare, обнаруживали его между видами рода Hordeum. Введено понятие индекса специфичности праймера, который позволяет с высокой степенью вероятности провести границу между праймерами по их специфичности при выявлении полиморфизма. Так, значение индекса специфичности ниже 5 характерно для слабо или неполиморфных праймеров, выше для высокополиморфных сортоспецифичных праймеров. Праймеры детектирующие генетическую изменчивость у низкополиморфных видов (строгие самоопылители, например, соя или ячмень) могут быть использованы для анализа у более полиморфных видов (кукуруза, пшеница перекрестники).

У близких по происхождению видов, амплифицированные продукты одинакового размера имеют и сходную нуклеотидную последовательность. Размер генетических дистанций зависит от соотношения общих продуктов амплификации к сумме продуктов. Анализ дендрограммы взаимоотношения видов Hulgare и некоторых близких видов из трибы Triticeae, показал генетическую близость H.agriocrithon и H.lagunculiforme. Близок к ним H.spontaneum. Данные RAPD-анализа подтверждают предположение Трофимовской о вторичности происхождения H.spontaneum, H.agriocrithon и H.lagunculiforme из H.vulgare. Показано значительное генетическое удаление H.chilense от культурного ячменя (H.vulgare). Генетические дистанции между H.chilense и другими представителями рода Hordeum сравнимы с таковыми с S.cereale.

Исследовали внутривидовой полиморфизм ячменя H.vulgare путем анализа ДНК 21 сорта из различных эколого-географических зон. Среднее значение индекса специфичности составило 1,05 по сравнению с 1,72 для межвидового анализа.

Проведена классификация и распределение сортов ячменя в зависимости от генетических дистанций между ними. В значительном большинстве распределение соответствовало педигри. Незначительно отличались сорта и полученные от них мутанты. RAPD-анализ показал значительное удаление сорта Джау Кабутак из Таджикистана от сортов европейской селекции. Показана возможность использования для характеристики исходного селекционного материала и RAPD-анализа ранжирования сортов в соответствии с уровнем генетической близости.

Проведено картирование продуктов ПЦР, при использовании самоопыляющейся популяции Одесский115/Гольф. самоопыляющаяся популяция при F7-8 F- рекомбинационном насыщении является наиболее подходящим объектом картирования маркерами с доминантным типом наследования. Показано, что амплификация полиморфного продукта ПЦР происходит строго с одного уникального места генома. Для картирования использовали маркеры с известной локализацией кодирующие изоферменты: a-амилазу I, b-амилазу I, эстеразы I и 5. Из гены, используемых произвольных праймеров и 10 пар праймеров для направленной амплификации показали различия между родителями только 12 произвольных и пары направленных праймеров. На основе 19 ПЦР маркеров и 2 изоферментов (b амилаза, эстераза 5) определено 6 групп сцепления, покрывающих шестую часть генома ячменя сМ). Найден один из полиморфного продукта (237 амплификации, наследуемый по кодоминантному типу. Установлено, что ПЦР маркер (P6#900) тесно сцеплен с геном кодирующим b-амилазу (BmyI).

Для идентификации локусов кодирующих количественные признаки, исследовали в течении двух лет (1994-1995) самоопыляющуюся популяцию F7- Одесского 115/Гольф по следующим количественным показателям: продуктивность, озерненность, число зерен на одном растении, масса 1000 зерен и кустистость.

Статистический анализ средних величин количественного признака между аллелями маркера проводился используя Стюдента и Фишера.

t-критерий F-критерий Достоверные результаты получены по следующим количественным показателям:

число зерен на одном растении, озерненность кустистость и масса 1000 зерен полученные в 1995 году в третьей группе сцепления. В 1994 году данные показатели не идентифицировались третьей группе сцепления и определялись в четвертой. Это связано с природными условиями окружающей среды: 1994 год был очень засушлив, тогда как 1995 - влажный. Таким образом, данные количественные показатели являются многолокусными. Показали достоверные результаты следующие маркеры:

P69#1050, P39#2300, P44#560 и P66#2300. Эти маркеры можно рекомендовать для анализа селекционно-генетического материала. Показана сложность идентификации локусов количественных признаков, проявление которых в известной мере зависит от окружающей среды.

ВЫВОДЫ Исследование меж- и внутривидовой изменчивости и картирование генома ячменя методом полимеразной цепной реакции с произвольными (H.vulgare) праймерами позволило сделать следующие выводы:

1. Для оптимизации условий проведения полимеразной цепной реакции с произвольными праймерами на основе разработанной математической модели RAPD необходимо в первых двух циклах реакции проводить отжиг при температуре ниже оптимальной для данного праймера. На основании анализа процесса амплификации предложена эмпирическая формула вычисления температуры плавления олигонуклеотидов, которая необходима для определения оптимальной температуры отжига праймера и матрицы. Предложен модифицированный метод выделения высокомолекулярной ДНК, реакционный состав для полимеразной цепной реакции, содержащий кроме известных компонентов (глицерин, Tween-20) полиэтиленгликоль.

Предложен подход к выявлению полиморфизма последовательности 2.

праймера при RAPD. Праймеры, выявляющие сортоспецифичный полиморфизм у слабополиморфных видов (строгие самоопылители) выявят таковой и у средне - и высокополиморфных близкородственных видов (перекрестноопыляющиеся).

3. Исследован межвидовой полиморфизм рода Hordeum L. Результаты филогенетического анализа позволяют подтвердить мнение что, H.spontaneum, H.agriocrithon и H.lagunculiforme вероятно являются одичавшими формами H.vulgare, а также, что H.bulbosum значительно отличающийся фенотипически от культурных ячменей, отличается и генетически, а H.chilense ближе к S.cereale и пшенице, чем к другим ячменям.

4. При исследовании внутривидового полиморфизма вида H.vulgare на 21 сорте показано обособленное положение сорта Джау Кабутак, который ближе по происхождению к диким ячменям, чем к современным сортам.

5. При картировании генома ячменя с помощью RAPD-маркеров, на 150 линях самоопыляющейся популяции F7-8, Одесский115/Гольф локализован 21 RAPD-маркер на шести группах сцепления. Суммарный размер покрываемый молекулярными маркерами равен 237 сМ. Идентифицирован молекулярный маркер тесно сцепленым с геном кодирущим b-амилазу.

6. В результате количественного анализа 150 линий самоопыляющейся популяции F7-8, Одесский 115/Гольф за 1994 и 1995 годы идентифицированы локусы количественных признаков в 3, 4 и 6 группах сцепления.

ЛИТЕРАТУРА 1. Анализ генома. Методы. М:Мир, под редaкцией К. Девиса, 1990.

2. Асеев М.В., Скакун В.Н., Баранов В.С. Анализ аллельного полиморфизма четырех коротких тандемных повторов в популяции северо-западного региона России.

// Генетика. - 1995. - T.31. - C.839-845.

3. Бадашкеева А.Г., Зарытова В.Ф. Меченные биотином олигонуклеотиды как зонды в методе молекулярной гибридизации. // Молекулярная биология. - 1989.- Т.23. C.1221-1226.

4. Бахтеев Ф.Х. Поблеммы экологии, филогении и селекции ячменя. М.:Академии Наук СССР., - 1953. - 218 c.

Вартапетян А.Б. Полимеразная цепная реакция обзор) 5. (краткий // Молекулярная биология. - 1991.- Т.25. C.926-937.

6. Генетика культурных растений: Зерновые культуры. Под ред.

В.Д.Кобылянского. - Л.: Агропромиздат. - 1986.- 264c.

7. Генная инженерия растений. Лабораторное руководство: Пер. с англ./Под ред. Дж.Дрейпера, Р.Скотта, Ф.Армитиджа, Р.Уолдена. - М.:

Мир, 1991. - 408 c.

8. Дебабов В.Г. Локальная амплификация нуклеиновых кислот- новый метод исследования (краткий обзор) // Молекулярная биология. - 1990. - Т.24. - C.304-309.

9. Долганов С.М. Аллозимные маркеры у приморского гребешка Mizuhopecten yessoensis (Jay). // Генетика. - 1995. - T.31. - C.825-832.

10. Жученко А.А. Экологическая генетика культурных растений. Кишинев:

Штиинца. - 1990 - 400c.

11. Жученко А.А., Король А.Б. Рекомбинация в эволюции и селекции. М.: Наука, 1985. - 400c.

12. Жученко А.А., Король А.Б., Андрющенко В.К. Сцепление между локусами количественных признаков и маркерными локусами. I. Модель. // Генетика. - 1978. T.14. - C.549-555.

13. Звейнек И.А. Генетический контроль типа развития ячменя. // Генетика. - 1995. - Т. 31. - C.597-599.

14. Иллечевский Н.Н., Кудрявцев А.М., Упелниек В.П., Метаковский Е.В. Анализ родословных сортов мягкой пшеницы на основе изучения полиморфизма a-амилазы. // Генетика. - 1995. - Т. 31. - C.1650-1654.

Календарь Р.Н., Сиволап Ю.М. Полимеразная цепная реакция с 15.

произвольными праймерами. // Биополимеры и клетка. - 1995.- №3-4. - C.55-65.

16. Календарь Р.Н. Компьютерная программа для построения эволюционных деревьев на основе электрофореграмм ДНК и белков. // Материалы конференции «Молекулярно-генетические маркеры и селекция растений».- Киев. - 1994. - С.25-26.

17. Компьютерная биометрика. / Под ре. В.Н.Носова. - М.: Изд-во МГУ. - 1990. - 232 с.

18. Комьютерный анализ генетических текстов./ А.А.Александров, Н.Н.Александров, М.Ю.Бородовский, Ю.А.Каламбет, А.З.Кистер, А.А.Миронов, П.А.Певзнер, В.А.Шепелев М.: Наука. - 1990. - 267 с.

19. Конарев В.Г. Белки как генетические маркеры. М.: Колос. - 1983. - 320c.

20. Конарев В.Г., И.П. Гаврилюк, Н.К.Губарева и др. Молекулярно-биологические аспекты прикладной ботаники, генетики и селекции. Под ред. В.Г.Конарева. - М.: Колос, 1993. - 447 c. - (Теоретические основы селекции. Т.1).

21. Коробко В.Г., Добрынин В.Н., Болдырев Е.Ф. Быстрый метод сборки ДНК из синтетических олигодезоксинуклеотидов. // Докл. АН СССР. - 1984. - №.278. - C.1250 1253.

22. Лакин Г.Ф. Биометрия: Учеб. пособие для биол. спец. вузов М.: Высш.шк., 1990.- 352 с.

23. Ландегрен У., Кайзер Р., Каски К., Худ Л. Диагностика с помощью ДНК:

молекулярные методы и их автоматизация. // Молекулярная биология. - 1990.- Т.24. C.920-939.

24. Левотин Р. Генетические основы эволюции. М.: 1978. - 351c.

25. Ли Ч. Введение в популяционную генетику. М.:Мир., 1978. - 557c.

26. Нецветаев В.П. Расположение b-амилазного локуса (Bmy I) в хромосоме 4 ячменя. // Цитология и генетика. - 1993. - Т.27. - С.74-78.

27. Нецветаев В.П. Индентификация листовых эстераз 11 и 12 у ячменя и их генетический контроль. // Генетика. - 1992. - T.28. - C.105- 28. Нецветаев В.П. Использование двойных дителосомиков для локализации генов у ячменя. // Цитология и генетика. - 1992. - Т.26. - C.26-30.

29. Нецветаев В.П., Поморцев А.А., Крестинков И.С. Распределение аллелей супероксиддисмутазного локуса Sod S в культуре ярового ячменя по территории бывшего СССР. // Генетика. - 1995. - T.31. - C.1664-1670.

Поморцев А.А., Нецветаев В.П., Ладогина М.П., Калабушкин Б.А.

30.

Полиморфизм гордеинов у сортов ярового ячменя. // Генетика. - 1994. - Т.30. - С.604 614.

31. Прейгель И.А., Король А.Б. Маркерный анализ количественных признаков. // Успехи современной генетики. - 1989. - T.16. - С.123-138.

32. Севериков В.Л., Беляев Ф.Ю. Аллозимный полиморфизм в природных популяциях и культурных сортах клевера лугового (Trifolium pratense L.). // Генетика. 1995. - T.31. - C.815-819.

33. Серебровский А.С. Генетический анализ. М.:Наука., 1970. - 242c.

34. Сиволап Ю.М., Календарь Р.Н., Чеботарь С.В. Исследование генетического полиморфизма злаковых растений при помощи ПЦР с произвольными праймерами. // Цитология и генетика. - 1994. - Т.28. - C.54-61.

35. Сиволап Ю.М., Календарь Р.Н. Генетический полиморфизм ячменя, детектируемый ПЦР с произвольными праймерами. // Генетика. - 1995.- Т.31. - C.1358 1364.

Сиволап Ю.М., Календарь Р.Н. Генетический полиморфизм злаков, 36.

детектируемый при помощи полимеразной цепной реакции со случайными праймерами. // Материалы конференции «Молекулярно-генетические маркеры и селекция растений».- Киев. - 1994. - С.59.

37. Сиволап Ю.М., Календарь Р.Н., Нецветаев В.П. Использование продуктов полимеразной цепной реакции для картирования генома ячменя (Hordeum vulgare L.).

// Генетика. - 1997. - Т.33. - C.53-60.

38. Созинов А.А., Попереля Ф.А. Полиморфизм глиадина и возможности его использования // Растительные белки и их биосинтез. М.:Наука, 1975. - C.65-76.

39. Созинов А.А. Полиморфизм белков и его значение в генетике и селекции.

М.:Наука, 1985. - 272 c.

40. Созинов А.А., Нецветаев В.П., Григорян Э.М., Образцов Н.С. Картирование локусов Hrd у ячменя (Hordeum vulgare L. emend. Var.et Bacht.). // Генетика. - 1978. T.14.- C.1610-1619.

41. Фогель Ф., Мотульски A. Генетика человека: В 3-х т. Т.2: Пер.с англ. - М.:Мир, 1990. - 378 c.

42. Чапля А.Е., Календарь Р.Н, Нецветаев В.П., Сиволап Ю.М. Генетический контроль a-амилаз и продуктов амплификации с единичным произвольным праймером у ячменя. // Материалы конференции «Молекулярно-генетические маркеры и селекция растений».- Киев. - 1994. - С.73-74.

43. Чапля А.Е., Календарь Р.М. Картування геному ячменю та iдентифiкацiя локусiв кiлькiсних ознак за допомогою iзоферментiв та полiмеразноi ланцюговоi реакцii з довiльними праймерами. // Матерiали мiжнародноi науково-практичноi конференцii молодих вчених та спецiалiстiв «Наслiдки наукових пошукiв молодих вчених-аграрникiв в умовах реформування АПК». - Чабани. - 1996. - C.215.

44. Чистяков Д.А., Гаврилов Д.К., Овчинников И.В., Носиков В.В. Анализ распределения аллельных четырех гипервариабельных тандемных повторов среди неродственных представителей русской нации, проживающих в городе Москве, с помощью полимеразной цепной реакции. // Молекулярная биология. - 1993. - T.27. C.1304-1314.

45. Шагинян И.А., Гинцбург А.Л. ПЦР-генетическое типирование патогенных микроорганизмов. // Генетика.- 1995. - T.31. - C.600-610.

46. Шулембаева K.K. Наследование признака «окраска зерна» у мягкой пшеницы. Генетика. - 1995. - T.31. - C.1322-1324.

47. Allard R.W. Formulas and tables to facilite the calculation of recombination values in heredity. // Hilgardia. - 1956. - V.24. - P.235-278.

48. Andersen W., Fairbanks D. Molecular markers: Important tools for plant genetic resource characterisation. // Diversity. - 1990. - V.6.- P.51-53.

49. Ayliffe M.A., Lawrence G.J., Ellis J.G., Pryor A.J. Heteroduplex molecules formed between allelic sequences cause nonparental RAPD bands. // Nucleic Acids Res.- 1994. V.22.- P.1632-1636.

50. Azuna M., Ozias-Akins P., Austin M.E. Genetic relatedness among rabbiteye blue berry (Vaccinium ashei) cultivars determined by DNA amplification using single primers of arbitrary sequence. // Genome. 1993.- V.36.- P.971-977.

51. Bachmann B., Luke W., Hunsman G. Improvement of PCR amplified DNA se guencing with the aid of detergents. // Nucleic Acids Res. - 1990.- V.18. - P.1304.

52. Backes G., Graner A., Foroughiwehr B., Fischbeck G., Wenzel G., Jahoor T. Location of quantitative trait loci (QTL) for agronomic impotant characters by use of a RFLP map in barley (Hordeum vulgare L.). // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.294 302.

53. Bannwarth W. Bathophenanthroline-Ru (II) complex as nonradiactive label for dideoxy DNA sequencing. // Anal. Biochem. - 1989. - V.181. - P.216-219.

54. Bark O.H., Havey M. Similarities and relationships among populations of the bulb onion as estimated by nuclear RFLPs. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.407-414.

55. Barnett W.R., Erfle H. Rapid generation of DNA fragments by PCR amplification of crude, synthetic oligonucleotides. // Nucleic Acids Res. - 1990. - V.18. - P.3094.

56. Barua U.M., Chalmers K.J., Thomas W.T.B., Hackett C.A. Molecular mapping of genes determining height, time to heading, and growth habit in barley (Hordeum vulgare). // Genome. - 1993. - V.36. - P.1080-1087.

57. Bassam B.J., Caetano-Anolles G., Gresshoff P.M. Fast and sensitive silve staining of DNA in polyacrylamide gels. // Anal.Biochem. - 1991. - V.80. - P.81-84.

58. Bonhomme A., Gale M.D., Koebner R.M.D., Nocolas P., Jahier J., Bernard M.

RFLP analysis of an Aegilops ventricosa chromosome that carries a gene conferring resis tance to leaf rust (Puccinia recondita) when transferred to hexaploid wheat. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.1042-1048.

59. Breslauer J.K., Frank R., Blocker H., Marky L. Predicting DNA duplex stability from the base sequence. // Proc.Natl.Acad.Sci. - 1986. - V.83. - P.3746-3750.

60. Caetano-Anolles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. DNA fingerprinting: MAAPing out a RAPD redefinition? // Bio/Technology - 1992. - V.10. - P.937.

61. Caetano-Anolles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. DNA amplification fingerprinting using very short arbitrary oligonucleotide primers. // Bio/Technology.- 1992. - V.9. - P.553 557.

62. Caetano-Anolles G., Bassam B.J., Gresshoff P.M. DNA amplification fingerprint ing: A strategy for genome analysis. // Plant. Mol. Biol. Rep. - 1991. - V.9. - P.292-305.

63. Caetano-Anolles G. Amplifying DNA with arbitrary oliginucleotide primers. // PCR Methods and Applications. - 1993.- V.3.- P.85-94.

64. Calson J.E., Tulsieram L.K., Glaubitz J.C., Luk V.W.K., Kauffeldt C., Rutledge R.

Segregation of random amplified DNA markers in F1 progeny of confers. // Theor.Appl.Genet. - 1991. - 83.- P.194-200.

65. Carbonari M., Sbarigia D., Cibati M., Fiorilli M. Optimization of PCR performance.

// Trends in Genetics. - 1993. - V.9.- P.42.

66. Castilho A., Heslopharrison J.S. Physical mapping of 5S and 18S-25S rDNA and repetitive DNA sequences in Aegilops umbellulata. // Genome. - 1995. - V.38. - P.91-96.

67. Chalmers K.J., Barua U.M., Hackett C.A., Thomas W.T.B., Waugh R., Powell W.

Indentification of RAPD markers linked to genetic factors controlling the energy requeire ment of barley. // Theor.Appl.Genet. 1993. - V.87. - P.314-320.

68. Chen, F., Hayes P.M. A comparison of Hordeum bulbosum-mediated haploid pro duction efficiency in barley using in vitro floret tiller culture. // Theor.Appl.Genet. - 1989. V.77. - P.701-704.

69. Clark A.G., Lanigan C.M.S. Prospects for estimating nucleotide divergence with RAPDs. // Mol.Biol.Evol. - 1993. - V.10. - №5 - P.1096-1111.

70. Costa G.L., Grafsky A., Weiner M.P. Cloning and analysis of PCR-generated DNA fragments. // PCR Methods and Applications. - 1994. - V.3.- P.338-345.

71. Decorte R., Cuppens H., Marynen R., Cassiman I. Rapid detection of hypervari able regions by the polymerase chain reaction technique. // DNA. - 1990.- V.9.- P.461-469.

72. Devos K.M., Gale M.D. Extended genetic maps of homoeologous group 3 chro mosomes of wheat, rye and barley. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85. - P.649-552.

73. Devos K.M., Bryan G.J., Collins A.J., Stephenson P. Gale M.D. Application of microsatellite sequences in wheat storage proteins as molecular markers. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.247-252.

74. Devos K.M., Gale M.D. The use of random amplified polymorphic DNA markers in wheat. // Theor.Appl.Genet. - 1992. - V.84. - P.567-572.

75. Dohmen G., Hesserberg H., Geiger H.H., Tudzynski I. CMS in tye - comparative RFLP and transcript analyses of mitochondria from fertile and male-sterile plants. // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.89.- P.1014-1018.

76. Dovidio R., Tanzarella O.A., Masci S., Lafiandra D., Porceddu E. RFLP and PCR analysis at Gli-1, Gli-2, Glu-1 and Glu-3 loci in cultivated and wild wheats.// Hereditas. 1992. - V.116. - P.79-85.

77. Dweikat I., Ohm H., Mackenzie S., Patterson F., Cambron S., Ratcliffe R. Asso cition of a DNA marker with Hessian Fly resistence gene H9 in wheat. // Theor.Appl.Genet. 1994. - V.89.- P.967-968.

78. Eckert A.K., Kunkel T.A. High fidelity DNA synthesis by Thermus aguaticus. // Nu cleic Acids Res. - 1990. - V.18. - P.3739.

79. Engelke D.R., Krikos A., Bruck M.E., Ginsburg D. Purification of Thermus aquati cus DNA polymerase expressed in Escherichia coli. // Anal. Biochem. - 1990. - V.191. P.396-400.

80. Faccioli P., Pecchioni N., Terzi V. Thionin STS marker for barley genotype inden tification. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.54-55.

81. Ferrenberg A.M., Landau D.P., Wong Y.J. Monte Carlo simulations: Hidden erros from «good» random number generators. // Phys.Rev.Lett. - 1992. - V.69. - P.3382-3384.

82. Ford O.S., Rose E.A. Long-distance PCR. // PCR Methods and Applications. 1994. - V.3.- P.146-161.

83. Forster B.P. Coordinator's report:Chromosome 4. //Barley genetics Newsletter. 1994. - V.24. - P.139-141.

84. Froussard P. rPCR: A powerful tool for random amplification of whole RNA se quences. // PCR Methods and Applications. - 1993.- V.2.- P.185-190.

85. Frova C., Sarigorla M. Quantative tarit loci (QTLs) for poleen thermotolerance de tected in maize. // Molecular and General Genetics. - 1994. - V.245. - P.424-430.

86. Gale M.D., Witcombe J.R. DNA markers and marker-mediated applications in plant breeding, with particular reference to Pearl millet breeding. // Biotechnology and crop improvement in Asia (Moss, J.P., ed.). - 1992. - P.323-332.

87. Galiba G., Quarrie S.A., Sutka J., Morgounov A., Snape J. RFLP mapping of the vernalization (Vrn1) and frost resistance (Fr1) genes on chromosome 5A of wheat. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.1174-1179.

88. Gentzbittel L., Perrault A., Nicolas P. Molecular phylogeny of the helianthus ge nus, based on nuclear restriction fragment length polymorphism. // Mol. Biol. Evol. - 1992. V.9. - P.872-892.

89. Gentzbittel L., Vear F., Zhang Y.X., Berville A., Nicolas P. Development of a con sensus linkage RFLP map of cultivated sunflower (Helianthus annus L.). // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.1079-1086.

90. Gobinda S., Kapelner S., Steve S.S. Formamid can dramatically improved the speceficity of PCR. // Nucleic Acids Res. - 1990. - V.18. - P.7465.

91. Gonzales J.M., Ferrer E. Random amplified polymorphic DNA analysis in Hor deum species. // Genome. - 1993. - V.36. - P.1029-1031.

92. Graner A., Jahoor A., Schondelmaier J., Siedler H., Pillen K., Fischbeck G., Wenzel G., Herrmann R.G. Construction of an RFLP map of barley. // Theor.Appl.Genet. 1991. - V.83.- P.250-256.

93. Gratapaglia D., Bertolucci F.L., Sederoff R.R. Genetic mapping of QTLs control ling vegetative propagation in Eucalyptus grandis and E.urophylla using a pseudo testcross strategy and RAPD markers. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.933-947.

94. Hackett C.A., Ellis R.P., Forster B.P., McNicol J.W., Macaulay M. Statistical analy sis of a linkage experiments in barley involving quantitative trait loci for heiht and ear emergence time and two genetic markers on chromosome 4. // Theor.Appl.Genet. - 1992. V.85.- P.120-126.

95. Hayes P.M., Iyamabo O., North American Barley Genome Mapping Project Sum mary of QTL effects in the Steptoe x Morex population. // Barley Genetics Newsletter. - 1993.

- V.23. - P.98-143.

96. Hayes, P.M., Liu B.H., Knapp S.J., Chen F., Jones B., Blake T., Franckowiak J., Rasmusson D., Sorrels M., Ullrich S.E.,Wesenberg D., Kleinhofs A. Quantitative trait locus effects and enviromental interaction in a sample of North American barley germplasm. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.87. - P.392-401.

97. Hayes P.M. Genetic stocks available through the North American Barley Genome Mapping Project. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.113-116.

98. Heum M., Kennedy A.E., Anderson J.A., Lapitan N.L.V., Sorrells M.E., Tanksley S.D. Construction of a restriction fragment length polymorphism map for bar ley (Hordeum vulgare). // Genome. - 1991. - V.34. - P.437-447.

99. Heun M. Mapping quantitative powdery mildew resistance of barley usin a restric tion fragment length polymorphism map. // Genome. - 1992. - V.35. - P.1019-1025.

100. Hombergen E.J., Bachma N.N. RAPD mapping of 3 QTLs determining trichome formation in microseris hybrid H27 (Asteraceae, Lactuceae). // Theor.Appl.Genet. - 1995. V.90. - P.853-858.

101. Hon F., Clancy J.A., Ullrich S.E. Conversion of an RFLP marker associated with malting quality to a PCR-based marker. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.7-9.

102. Hu J., Quiros C.F. Indentification of broccoli and cauliflower cultivars with RAPD markers. // Plant Cell Rep. - 1991. - V.10. - P.505-511.

103. Huestis G.M., McGrath J.M., Quiros C.F. Development of genetic markers in cel ery based on restriction fragment length polymorphisms. // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.85.

- P.889-896.

104. Hung T., Mak K., Fong K. A specificy enchancer for polymerase chain reaction. // Nucleic Acids Res. - 1990.- V.18. - P.4953.

105. Jansen R.C., Van Ooijen J.W., Stam P., Lister C., Dean C. Genotype-by enviroment interaction in genetic mapping of multiple quantitatine trait loci. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.91. - P.33-37.

106. Jauhar P.P. Morphological and cytological characteristic of some wheat x barley hybrids. // Theor.Appl.Genet. - 1995.- V.90. - P.872-877.

107. Jensen H.P. Present of barley powdery mildew resistence gene Mla8 in some 'Pallas' near-isogenic barley lines. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.71-74.

108. Jensen J. Estimation of recombination parametrs between a quantitative trait locus (QTL) and two marker gene loci. // Theor.Appl.Genet. - 1989.- V.78. - P.613-618.

109. Joycelyn E. Primary structure of a c-hordein gene from barley. // Carlsberg Res.Commun. - 1988. - V.53. - P.274-258.

110. Kasha K.J., Kleinhofs A., N.A.B.G.M.P. Mapping of barley cross Harrington x TR306. // Barley Genetics Newsletter. - 1993. - V.23. - P.65-69.

111. Kazan K., Manners J.M., Cameron D.F. Inheritance of random amplified poly morphic DNA markers in an interspecific cross in the genus Stylosanthes. // Genome. 1993.- V.36.- P.50-56.

112. Kazan K., Manners J.M., Cameron D.F. Genetic relationships and variation in the Stylosanthes guianensis species complex assessed by random amplified polymorphic DNA.


// Genome. - 1992.- V.36. - P.43-49.

113. Kleinhofs A., Kilian A., Kudrna D. The NABGMP mapping progress report, Spring 1993. // Barley Genetics Newsletter. - 1992. - V.22. - P.27-41.

114. Kleinhofs A., Kilian A., Saghai Maroof M., Biyashev R.M., Hayes P.M., Chen F., Lapitan N., Fenwick A., Blake T.K., Kanazin V., Ananiev E., Dahleen L., Kudrna D., Bollinger J., Knapp S.J., Liu B., Sorrells M., Heun M., Franckowiak J.D., Hoffman D., Skadsen R., Steffenson B.J. A molecular, isozyme, and morphologicalmap of the barley (Hordeum vul gare) genome. // Theor.Appl.Genet. - 1993.- V.86.- P.705-712.

115. Kleinhofs A., Kilian A., Kudrna D. The NABGMP Steptoe x Morex mapping pro gress report. // Barley Genetics Newsletter. - 1993. - V.23. - P.79-83.

116. Knott D.R., Janet W. Genetic interactions amoung four genes for resistance to stem rust in bread wheat. // Genome. - 1988. - V.30. - P.182-185.

117. Koller B., Lehmann A., McDermott J.M., Gessler C. Identification of apple culti vars using RAPD markers. // Theor.Appl.Genet. - 1993.- V.85. - P.901-904.

118. Kuller G.H., Huang D.P., Manak M.M. Labelling of DNA probes with a photoacti vatable hapten. // Anal. Biochem. - 1989. - V.177. - P.392-395.

119. Kunzel G., Sorokin A., Marthe F. Translocation derived duplications involving short arm segments of barley chromosome 5 as defined genetically by physical RFLP map ping. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.104-107.

120. Kutcher H.R., Bailey K.L. Association of the glossy sheath/spike (gs4) and orange lemma (o) traits and a random amplified polymorphic DNA (RAPD) marker with reaction to common root (Cochliobolus sativus) in barley. // Barley Genetics Newsletter.

- 1993. - V.23. - P.33-35.

121. Lander E.S., Green P., Abrahamson J., Barlow A., Daly M.J., Lincoln S.E., New burg L. MAPMAKER: An interactive comuter package for constructing primary genetic link age maps of experimental and natural populations. // Genomics. - 1987.- V.1- P.174-181.

122. Lange K., Sobel E. A random walk method for computing genetic location scores.// J.Hum.Genet. - 1991. - V.49. - P.1320-1334.

123. Lefebvre V., Palloix A., Caranta C., Pochard E. Construction of an intraspecific integrated linkage map of pepper using molecular markers and double haploid progenies. // Genome. - 1995. - V.38. - P.112-121.

124. Link W., Dixkens C., Singh M., Schwall M., Mrlchinger A.E. Genetic diversity in European and Mediterranean Faba bean germ plasm revealed br RAPD markers. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.27-32.

125. Lion T., Haas O.A. Nonradiactive labelling of probe with digoxigenin by PCR. // Anal. Biochem. - 1990. - V.188. - P.335-237.

126. Liu Y.-G., Ikeda T.M., Tsunewaki K. Moderately repeated, dispersed, and highly variable (MRDHV) genomic sequences of common wheat usable for cultivar indentification. // Theor.Appl.Genet. 1992. V.84. P.535-543.

127. Love M.J., Knight A.M., McAleer M.A., Todd J.A. Towards construction of a high resolution map of the house genome using PCR-analysed microsatellites. // Nucleic Acids Res. - 1990.- V.18. - P.4123.

128. Lowe T., Sharefkin J., Yang S.Q., Dieffendach C.W. A computer program for selection of oligonucleotide primers for PCR. // Nucleic Acids Res. - 1990.- V.18.

- P.1757-1562.

129. Lu Y.H., Negre S. Use of glycerol for enhanced efficiency and specificity of PCR amplification. // Trends in Genetics. - 1993.- V.9.- P.297.

130. Ma Z.Q., Sorrels M. Genetic analysis of fertility restoration in wheat using restric tion fragment lenght polymorphisms. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.1137-1143.

131. Maroof M.A.S., Byyashev R.M., Yang G.P., Zhang Q., Allard R.W. Extraordinarily polymorphic microsatellite DNA in barley: species diversity, chromosomal locations, and population dymamics. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. - V.91. - P.5466-5470.

132. McClelland M., Welsh J. RNA fingerprinting be arbitrarily primed PCR. // PCR Methods and Applications. - 1994. - V.4.- P.66-81.

133. McClelland M., Welsh J. DNA fingerprinting by arbitrarily primed PCR.// PCR Methods and Applications. - 1994.- V.4. - P.59-65.

134. Meinkoth J., Wahl G. Hibridization of nucleic asids immobilizes on solid support.

// Anal.Biochem. - 1984. - V.138. - P.267-284.

135. Mgonja M.A., Dahleen L.S., Franckowiak J.D. Subset from mapping populations for location of new genes in barley. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.14-23.

136. Micheli M.R., Bova R., Pascale E., D`Ambrosio E. Reproducible DNA fingerprint ing with the random amplified polymorphic DNA (RAPD) method. // Nucleic Acids Res. 1994. -V.22.- P.1921-1922.

137. Miklas P.N., Stavely J.R., Kelly J.D. Identification and potential use of a molecu lar marker for rust resistance in common bean. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85. - P.745 749.

138. Mitsuhashi M., Cooper A., Ogura M., Shinagawa T., Yano K., Hosokawa T. Oli gonucleitide probe design - a new approach. // Nature. - 1994.- V.367. - P.759-761.

139. Molnar S.J., McKay A. Restriction fargment analysis of Hordeum gene in West ern Canadian 2-rowed barley. // Canadian Jornal of Plant Science. - 1995. - V.75. - P.191 193.

140. Moore E.R., Shepherd J.W., Hoskins J. Design of PCR primers that detect only mRNA in the presence of DNA. // Nucleic Acids Res. - 1990. - V.18. - P.1921.

141. Morgante M., Rafalski A., Biddle P., Tingey S. Genetic mapping and variability of seven soybean simple sequence repeat loci. // Genome. - 1994. - V.37. - P.763-769.

142. Motro U., Soller M. Sequential sampling in determining linkage between marker loci and quantitative trait loci. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85.- P.658 664.

143. Mullis K.B., Faloona F.A., Scharf S., SaikimR., Horn G., Erlich H. Specific enzymatic amplification of DNA in vitro: The polymerase chain reaction. // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol.. - 1986. - V.51.- P.263-273.

144. N.A.B.G.M.P. Mapping of quantitative trait loci associated with malting quality in barley. // Barley Genetics Newsletter. - 1993. - V.23. - P.84-97.

145. Namth D.M., Lapitan N.L. Comparative RFLP mapping of Hordeum vulgare and Triticum tauschii. // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.89.- P.865-872.

146. Nei M., Miller J.C. A simple methods for estimating average number of nucleotide substitutions within and between populations from restriction data. // Genetics. - 1990. V.125. - P.873-879.

147. Nei M. Molecular evolutionary genetics. Columbia University Press, New York.

1987. P.106-107.

148. Nei M., Li W.-H. Mathematical model for studying genetics variation in terms of restriction endonucleases. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1979. - V.76. - P.5269-52-73.


149. Nelson D.L., Ledbetter S.A., Corbo L., Victoria M.F., Ramirez-Solis R., Wester T.D., Ledbetter D.H., Gaskey C.T. Alu polymerase chain reaction: A method for rapid isola tion of human-specific sequences from complex DNA sources. // Proc.Natl.Acad.Sci.- 1989. V.86.- P.6686-6690.

150. Netsvetaev V.P. Linkage of Hordeum spontaneum blue endosperm gene (Ble) and two esterase loci (Est 4, Est 11) with marker genes on barley chromosome 3. // Barley Genetics Newsletter. 1992. V.21. P.60-63.

151. Netsvetaev V.P., Sozinov A.A. Location of a hordeum G locus, Hrd G, on chro mosome 5 of barley. // Barley Genetics Newsletter. - 1984. - V.14. - P.4-6.

152. Netsvetaev V.P. Chromosomal location of loci Est I 2 and Amy 2 in barley. // Bar ley Genetics Newsletter. - 1992. - V.22. - P.42-43.

153. Netsvetaev V.P. Genotypic variability of malt quality in spring barley. // Cereal Research Communications. 1994. V.22. N1-2. P.65-70.

154. Netsvetaev V.P., Kalendar R.N., Sivolap Yu.M. b-amylase polimorphism in bar ley is detected by PCR with arbitrary primer. // Barley Genet. Newslett., - 1995. - V.24. P.80-83.

155. Netsvetaev V.P. Location on barley chromosome 3 of loci Est 1 and Est 2, coding esterases 1 and 2. // Barley Genetics Newsletter. 1992. V,21. P.63-66.

156. Netsvetaev V.P. Position of the b-amylase locus Bmy 1, on barley chromosome in relation to four genes. // Barley Genetics Newsletter. 1992. V.21. P.67-69.

157. Netsvetaev V.P., Sozinov A.A. Location of a hordein G locus, Hrg G, on chromo some 5 of barley. // Barley Genet. Newslett. - 1984. - V.14. - P.4-6.

158. Netsvetaev V.P., Krestinkov I.S. Chrosomal position of the superoxide dismutase locus, Sod I (=Sod B), in barley. // Barley Genetics Newsletter. - 1992. - V.22. - P.44-45.

159. Ordon F., Bauer E., Dehmer K.J., Graner A., Friedt W. Identification of a RAPD marker linked to the BaMMV/BaYMV resistence gene ym4. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.123-126.

160. Oser A., Collasius M., Valet G. Multiple end labelling of oligonucleotides with terbium chelate-substitued psoralen for time-resolved fruorescence detection. // Anal.Bioch.

- 1990. - V.191. - P.295-301.

161. PCR protocols: A guide to methods and applications. Innis C.S., San Diego. - 1990. - P.482.

162. PCR technology: Principle and aplications for DNA amplification. Erlich H.A. New York. - 1989. - P.246.

163. Palazolo M.J., Stanley S.A., Christophen M.H., David S.A., Daniel H.L. Opti mized strategies for sequence-tagged-size selection in genome mapping. // Proc.Nat.Sci.USA. - 1991. - V.88. - P.8034-8038.

164. Pan A., Hayes P. Genetic-analysis of the components of winterhardiness in bar ley (Hordeum vulgare L.). // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.89.- P.900-910.

165. Paran I., Michelmore R.W. Development of reliable PCR-based markers linked to downy mildew resistance genes in lettuce. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85.- P.985-993.

166. Paran I., Kesseli R., Michelmore R. Indentification of restriction fragment lenght polymorphism and random amplified polymorphic DNA markers to downy mildew resistance genes in lettuce, using near-isogenic lines. // Genome. - 1991. - V.34.- P.1024-1027.

167. Paterson A., Lander E., Lincoln S., Hewitt J, Peterson S.,Tankley S. Resolution of quantitative traits into mendelian factors factors using a complete RFLP linkage map. // Nature. - 1988. - V.335.- P.721-726.

168. Pelger S. Prolamin variation and evolution in Triticeae as recognized by mono clonal antibodies. // Genome. - 1993. - V.36. - P.1042-1048.

169. Pener G.A., Chong J., Levesque-Lemay M., Molnar S.J., Fedak G. Indentification of a RAPD marker linked to the oat stem rust gene Pg3.

// Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85.- P.702-705.

170. Penner G.A. Identification of an RAPD markers for the crow rust resistance gene Pc68 in oats. // Genome. - 1993. - V.36.- P.818-820.

171. Plaschke J., Ganal M.W., Roder M.S. Detection of genetic diversity in closely related wheat using microsatellite markers. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.91. - P.1001 1007.

172. Plomion C., Omalley D.M., Durel C.E. Genomic analysis in martime pine open pollinated seeds of the same individual. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.1028-1034.

173. Pluthero F.G. Rapid purification of high-activity Taq DNA polymerase. // Nucleic Acids Research. - 1993. - V. 21. - P.4850-4851.

174. Pollard-Knight D., Simnonds A.C., Schoap A.P. Nonradiactive DNA detection of southern blots by enzymatically triggered chemiluminescence. // Anal.Bioch. - 1990. - V.185.

- P.353-358.

175. Praf O., Lopez E., Mathis G. Europium (III) cryptate: a fluorescent label for the detection of DNA hybrids on solid support. // Anal. Biochem. - 1991. - V.195. - P.283-289.

176. Ragot M., Hoisington D.A. Molecular markers for plant breeding: comparisons of RFLP and RAPD genotyping costs. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.86. - P.975-984.

177. Rayapati P.J., Gregory J.W., Lee N. A linkage map of diploid avena based on RFLP loci and a locus conferring resistance to 9 isolates of Puccinia coronata var. Avenae. // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.89.- P.831-837.

178. Riber S.M., Rieber M. A Hoescht H 33258 agarose plate assay for the estimation of nanograme DNA levels without RNA interference application in PCR and estimation of plasmid and cytoplamic DNA. // Nucleic Acids Res. - 1990. - V.18. - P.1918.

179. Roder M.S., Sirrells M.E., Tanksley S.D. Pulse-field gel analysis of 5S and satel lite DNA in barley. // Genome. - 1995. - V.38. - P.153-157.

180. Rongwen J., Akkaya M.S., Bhagwat A.A., Lavi U., Cregan P.B. The use of mi crosatellite DNA markers for soybean genotype indentification. // Theor.Appl.Genet. - 1995. V.90. - P.43-48.

181. Roy A., Frascaria N., MacKay J., Bousquet J. Segregating random amplified po lymorphic DNAs (RAPDs) in Betula alleghaniensis. // Theor.Appl.Genet. - 1992. - V.85. P.173-180.

182. Rychlik W., Soencer W.Y., Rhoads R.F. Optimization of the anneling tempera ture for DNA amplification in vitro. // Nucleic Acids Res. - 1990. - V.18. - P.6400-6414.

183. Saitou N., Nei M. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. // Mol.Biol.Evol. - 1987. - V.4. - P.406-425.

184. Schachermayr G.M., Messmer M.M., Feuillet C., Winzeler H. Winzeler M., Keller R. Identification of molecular markers linked to the Agropyron elongatum derived leaf rust resistence gene LR24 in wheat. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.982-990.

185. Schiavo F.L., Mela L., Ronchi V.N., Tetzi M. Electrophoretic mobility of isozymes from different plant species its possible use in identifying cell hybrids. // Plant Sci.Lett., 1980. - V.18. - P.45-55.

186. Schmitz G.G., Walter T., Seibl R., Kessler C. Nonradiactive labelling of oligonu cleotides in vitro with the hapten digoxigenin by tailing with terminal transferase. // Anal. Bio chem. - 1991. - V.192. - P.222-231.

187. Schmidt T., Boblenz K., Metzlaff M., Kaemmer D., Weising K., Kahl G. DNA fin gerprinting in sugar beet (Beta vulgaris) - identification of double-haploid breeding lines. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85. - P.653-657.

188. Simpson S.P. Detection of linkage between quantitative trait loci and restriction fragment length polymorphisms using inbred lines. // Theor.Appl.Genet. - 1989.- V.77. P.815-819.

189. Sneath P.H., Socal R.R. Numerical taxonomy: the principles and practice of nu merical classification. - San Francisco: W.H.Freeman, 1973.

190. Sobral B.W.S., Honeycutt R.J. High output genetic mapping of polyploids using PCR-generated markers. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.86. - P.105-112.

191. Soliman K.M. Genetic analyses of rDNA spacer-length variation in barley. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85. - P.913-919.

192. Soller M., Beckmann J.S. Genetic polymorphism in varietal identification and ge netic improvement. // Ibid. - 1983. - V.67. - P.25-33.

193. Song K., Slocum M.K., Osborn T. Molecular marker analysis of genes-controlling morphological variation in Brassica rapa (Syn. Campestris). // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.1-10.

194. Song Y.C., Gustafson J.P. The physical location of 14 RFLP markers in rice (Orysa satyva L.). // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.113-119.

195. Sorokin A., Marthe F., Kunzel G. Integration of 37 translocation breakpoints of barley chromosome 5 into the Igri/Franka derived RFLP map. // Barley Genetics Newsletter.

- 1995. - V.24. - P.108-112.

196. Stiles J.I., Lemme C., Sondur S., Morshidi M.B., Manshardt R. Using randomly amplified polymorphic DNA for evaluating genetic relationships among papaya cultivars. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - V.85. - P.697-701.

197. Stuckle E.E., Emmrich C., Grob U., Neilsen P.J. Statistical analysis of nucleotide sequences. // Nucleic Acids Res.- 1990. - V.18. - P.6641-6647.

198. Svitashev S., Bryngelsson T., Vershinin A., Pedersen C., Sall T., Vonbothmer R.

Phylogenetic analysis of the genus Hordeum using repetitive DNA-sequences. // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.89. - P.801-810.

199. Tingey S.V., gel Tufo J.P. Genetic analysis with random amplified polymorphic DNA markers. // Plant Physiol.- 1993. - V.101. - P.349-352.

200. Tinker N.A., Mather D.E., NABGMP Main effects of quantitative train loci in Har rington/TR306 two-row barley.// Barley Genetics Newsletter. - 1993. - V.23. - P.72-78.

201. Tinker N.A., Fortin M.G., Mather D.E. Random amplified polymorphic DNA and pedigree relationships in spring barley. // Theor.Appl.Genet. - 1993.- V.85.- P.976-984.

202. Tomas W.T.B., Powell W., Waugh R., Forster B.P., Chalmers K.J., Barua U.M., Swanston J.S., Ellis R.P. Quantitative trait loci in a North West European spring barley cross-Blenheim x E224/3. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.41-45.

203. Torres A.M., Weeden N.F., Martin A. Linkage among isozyme, RFLP and RAPD markers in Vicia faba. // Theor.Appl.Genet. - 1993.- V.85.- P.937-945.

204. Tranckowiak J.D. Notes on linkage drag in Bowman backcross derived lines of spring barley. // Barley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.63-70.

205. Vaccino P., Metakovsky E.V. RFLP patterns of gliadin alleles in Triticum aesti vum L. - implication for analysis of the organization and evolution of complex loci. // Theor.Appl.Genet. - 1995. - V.90. - P.173-181.

206. Vale G., Torrigiani E., Toubia-Rahme H., Delogu G. Molecular cloning of barley pathogen induced gene coding for «Thaumatin like» protein. // Barley Genetics Newsletter. 1995. - V.24. - P.12-13.

207. Van Coppenolle B., Watanabe I., Van Hove C., Second G., Huang N., McCouch S.R. Genetic diversity and phylogeny analusis of Azolla based on DNA amplification by arbi trary primers. // Genome. - 1993.- V.36.- P.686-693.

208. Vanhintum T.J.L. Comparison of marker systems and construstion of a core colection in a pedigree of European spring barley. // Theor.Appl.Genet. - 1994. - V.89. P.991-997.

209. Versalovic J., Koeuth T., Lupski J.R. Distribution of repetitive DNA sequences in eubacteria and applications to fingerprinting of bacterial genomes. // Nucleic Acids Res. 1991. - V.19. - P.6823-6831.

210. Welsh J., McClelland M. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary prim ers. // Nucleic Acids Res.- 1990. - V.18. - P.7213-7218.

211. Welsh J., Honeycutt R.J., McClelland M., Sobral B.W.S. Parentage determina tion in maize hybrids using the arbitrarily primed polymerase chain reaction (AP-PCR). // Theor.Appl.Genet. - 1991.- V.82.- P.473-476.

212. Williams K.J., Fisher J.M., Langridge I. Identification of RFLP markers linked to the cereal Cyst-nematode resistance gene (CRE) in wheat. // Theor.Appl.Genet. - 1994. V.89. - P.927-930.

213. Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.L., Rafalscki J.A., Tingly S.V. DNA poly morphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. // Nucleic Acids Res. - 1990. - V.18 - P.6513-6535.

214. Wolff K., Schoen E.D., Peters-Van Rijn J. Optimization of random amplified po lymorphic DNAs in chrysanthemum. // Theor.Appl.Genet. - 1993. - 86.- P.1033-1037.

215. Yanagisawa T., Hayashi M., Hirai A., Harada K. DNA-fingerprinting in soybean (Glycine max L. Merrill) with oligonucleotide probes for simple repetitive sequences. // Euphytica. - 1994. - V.80. - P.129-136.

216. Yoshimi R., Konishi T. Linkage analysis of several isozyme loci in barley. // Bar ley Genetics Newsletter. - 1995. - V.24. - P.35-37.

217. Lowe T., Sharefkin J., Yang S.Q., Dieffendach C.W. A computer program for selection of oligonucleotide primers for PCR. // Nucleic Acids Res. - 1990.- V.18.

- P.1757-1562.

Автор выражает благодарность за помощь, оказанную при выполнении диссертационной работы и за ценные советы научному руководителю, зав. отделом генной инженерии Ю.М.Сиволапу, ведущим сотрудникам отдела генетических основ селекции В.П. Нецветаеву, зав. отделом информатики и вычислительной техники В.Ф.Герасименко и старшему сотруднику отдела генетических основ селекции А.Н.

Хохлову.



Pages:     | 1 | 2 ||
 





 
© 2013 www.libed.ru - «Бесплатная библиотека научно-практических конференций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.