авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ БИБЛИОТЕКА РОССИИ

КОНФЕРЕНЦИИ, КНИГИ, ПОСОБИЯ, НАУЧНЫЕ ИЗДАНИЯ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ


Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |
-- [ Страница 1 ] --

АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9.

АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ

ВЕТЕРИНАРНОЙ

МЕДИЦИНЫ

УДК 619:636.002.6:658.562

С.В. Мезенцев

Управление ветеринарии государственной ветеринарной службы Алтайского края

по г. Барнаулу, РФ, msv.dok@rambler.ru

ОБЕСПЕЧЕНИЕ БЕЗОПАСНОСТИ ПРОДОВОЛЬСТВЕННОГО СЫРЬЯ

Основным критерием достижения продовольственной безопасности является уровень са мообеспеченности города, региона и т.д. продуктами питания. Суть его сводится к способно сти государства удовлетворить потребности населения продуктами питания, питьевой водой и другими пищевыми продуктами вне зависимости от внешних и внутренних угроз. При этом их объем, качество и ассортимент должны быть необходимыми и достаточными для нормально го физического и социального развития личности.

В условиях экономических и социальных изменений в России, а также завершения капита лизации производства определилась тенденция расширения сырьевой зоны продовольственно го рынка в регионах России. Практическое вступление России в ВТО и организация Единого таможенного союза законодательно закрепляют либерализацию потоков продукции животно го и растительного происхождения на региональные продовольственные рынки.

Разнообразие экологических связей среди животных определяют пути циркуляции патоген ных микроорганизмов от одних животных к другим и возможные варианты сочетания возбу дителей инфекционных заболеваний.

Природные и техногенные экологические нагрузки на окружающую природную среду и ее обитателей непосредственно и через растительные и животноводческие продукты оказывают постоянное или периодическое воздействие на животных.

Все это порождает эпизоотическую опасность многих зоонозов.

Анализ эпизоотической ситуации подтверждает потребность совершенствования методов эпизоотической оценки и организации эпизоотического мониторинга сырьевой зоны в субъек тах РФ, а также усиление ветеринарного контроля за ее эпизоотической безопасностью, включая ветеринарную санитарию и ветеринарно-санитарную экспертизу.

В настоящее время решение проблем по обеспечению надежной и эффективной защиты животных от инфекционных болезней, производства безопасного сырья животного происхож дения, высококачественных в ветеринарном и санитарном отношении продуктов питания явля ется основным направлением фундаментальных и прикладных исследований по созданию ве теринарного благополучия в отдельно взятом регионе и в целом по стране, имеет важное значение для сохранения здоровья населения.

Добиться полной ликвидации тех или иных инфекционных болезней в настоящее время не представляется возможным, особенно это касается природно-очаговых заболеваний. Контро лировать же развитие эпизоотического процесса, снижать его интенсивность, предупреждать потери от инфекционных болезней вполне возможно, используя знание закономерностей развития эпизоотического процесса каждой болезни и групп заболеваний [1].

Перед ветеринарией стоит задача обеспечения благополучия по всем болезням, включая социально значимые (лейкоз, туберкулез, бруцеллез и др.) и экономически значимые (афри канская чума свиней, грипп птиц, ящур и др.).

Концепция единого мирового здоровья «Человек и животное — единое здоровье», провоз глашенная ВОЗ и МЭБ, является краеугольным камнем всемирной стратегии управления рис ками на границе «животное-человек». Важность ветеринарных аспектов охраны здоровья че ловека обусловлена зоонотическим потенциалом возбудителей инфекций. Кроме того, источ никами возбудителей основных пищевых токсикоинфекций человека (сальмонеллы, эшерихии, иерсинии, листерии, кампилобактерии) являются преимущественно сельскохозяйственные жи вотные, факторами передачи патогенов — продукты животноводства [4].

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ Внедрение европейских систем контроля, как «более современных», еще больше снижает соответствующие и действенные меры по обеспечению безопасности сырья и продуктов жи вотного и растительного происхождения отечественного производства. В настоящее время в США подошли к пересмотру основных концепций ХАССП на предмет их соответствия необ ходимым критериям безопасности.

Современная ситуация с качеством продуктов питания в стране уже достигает критических пределов. Продовольственная безопасность населения России находится в очень опасной зоне потребления небезопасных для здоровья многих видов продовольствия, что вызывает ослож нения социальных процессов в стране и отдельных регионах. Социальная опасность потребле ния усиливается состоянием качества мяса и мясопродуктов.

На фоне снижения контроля за оборотом и реализацией готовых пищевых продуктов воз никает необходимость обеспечения экологической и пищевой безопасности сырьевой базы сельскохозяйственной продукции.

Заболеваемость населения сальмонеллезами остается на высоком уровне и последние 10 лет сохраняется на уровне 30-37 на 100 тыс. населения (табл. 1). В 2012 г. в Российской Федерации заболеваемость сальмонеллезами составила 36,6 на 100 тыс. населения, при этом зарегистрировано 14 случаев с летальным исходом, в т.ч. 4 случая детей до 17 лет [3].

Таблица 1 — Динамика заболеваемости пищевыми инфекциями в России Годы 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 Сальмонеллез Абсолютное число 48506 45010 42124 45636 50856 50884 49981 50803 51280 Показатель на 33,9 31,1 29,3 31,9 35,7 35,8 35,2 35,8 35,9 36, тыс. населения Эшерихиоз Абсолютное число 16741 15920 16447 14549 15727 14654 16684 16887 15384 Показатель на 11,70 11,00 11,44 10,17 11,04 10,31 11,75 11,90 10,77 10, тыс. населения Иерсиниоз Абсолютное число 1978 2434 2216 2492 3180 2727 2291 2572 2385 Показатель на 1,4 1,7 1,54 1,74 2,23 1,92 1,61 1,81 1,67 1, тыс. населения Кампилобактериоз Абсолютное число 391 364 394 398 395 485 515 803 1153 Показатель на 0,3 0,2 0,27 0,28 0,28 0,34 0,36 0,57 0,81 1, тыс. населения В отличие от России, по данным ВОЗ, в европейских государствах кампилобактериоз зани мает первое место по значимости среди «пищевых зоонозов», опережая сальмонеллез.

В этиологической структуре сальмонеллеза людей, как и в предыдущие годы, преоблада ют сальмонеллы группы D (S. enteritidis). В последние годы отмечается рост удельного веса сальмонеллезов группы C, выделяемых из внешней среды и пищевых продуктов, в первую очередь S. infantis [3].

Эти данные подтверждают ранее сделанные выводы о замещении серовариантов сальмо нелл неспецифическими для нашего региона, поступающими с импортной продукцией [2].

Несмотря на сложность диагностики и дифференциации в России регистрируются зооан тропонозные и природно-очаговые заболевания у людей (табл. 2).

Таблица 2 — Заболеваемость людей природно-очаговыми и зооантропонозными инфекциями 2010 г. 2011 г. 2012 г.

показатель показатель показатель за Нозологические абсо- абсо заболеваемо- абсолют- заболеваемо- болеваемости формы лютные лютные сти на 100 тыс. ные числа сти на 100 на 100 тыс.

числа числа населения тыс. населения населения Сибирская язва 22 0,02 4 0,00 12 0, Бруцеллез (первичный) 431 0,30 486 0,34 465 0, Лептоспироз 366 0,26 269 0,19 251 0, Орнитоз 48 0,03 61 0,04 108 0, Листериоз 53 0,04 55 0,04 35 0, Количество заболевших значительно ниже данных по пищевым инфекциям, но при этом социальная значимость и опасность заболеваний значительно выше.

АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ Листериоз в данном случае отнесен к группе природно-очаговых заболеваний, т.к. чаще протекает в форме инфекции с поражением центральной нервной системы (менингиты и т.д.).

В настоящее время безопасность животноводческой продукции обеспечивается прижиз ненной диагностикой и послеубойной ветеринарно-санитарной экспертизой. Несмотря на про ведение предубойного осмотра на предмет исключения болезней при проведении ветсанэкс пертизы выявляются инфекционные заболевания, а основное обнаружение инвазий происходит в процессе ветеринарной экспертизы (табл. 3, 4).

Таблица 3 — Результаты ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов убоя крупного рогатого скота в Алтайском крае Выявлено случаев за год Заболевания 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 Всего инва 968 1984 1539 2171 3501 3077 3347 3163 3898 4168 2931 1981 зиионных Всего ин 1433 1088 1072 1121 1146 974 943 1093 559 930 490 884 фекционных Таблица 4 — Результаты ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов убоя свиней в Алтайском крае Выявлено случаев за год Заболевания 2000 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 2009 2010 2011 Всего инва 4867 3384 4281 14204 10265 10353 12355 17226 12162 12163 7442 6997 зионных Всего ин 216 63 138 264 140 117 23 50 17 - - - фекционных Из таблиц 3, 4 следует, что количество выявленных инфекционных заболеваний при прове дении ветеринарно-санитарной экспертизы на протяжении последних 13 лет непрерывно сни жается или остается на прежнем уровне, тогда как уровень выявления инвазионных заболева ний имеет постоянные высокие показатели.

На основании приведенных данных можно сделать следующие выводы:

1. Эпизоотическое состояние животноводства влияет на продовольственную безопасность государства и на жизнедеятельность населения.

2. В популяциях животных циркулируют возбудители природно-очаговых инфекций, кото рые представляют опасность для человека при непосредственном контакте или с использова нием пищевой цепочки.

3. Данные ветсанэкспертизы подтверждают значительный рост и циркуляцию в стадах жи вотных возбудителей паразитарных болезней, что снижает экономическую эффективность отдельных отраслей животноводства.

Библиографический список 1. Гуславский И.И. с соавт. Краевая эпизоотология инфекционных болезней, основы про гнозирования, профилактики и борьбы с ними: учебное пособие. — Барнаул: Изд-во АГАУ, 2009. — 202 с.

2. Мезенцев С.В. Распространение сальмонелл в продукции животноводства // Практик.

— 2010. — № 2. — С. 6-11.

3. Обеспечение биологической безопасности пищевых продуктов, острые кишечные ин фекции: государственный доклад «О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2012 году». Электрон. дан., 2013.

4. Панин А.Н. Продовольственная безопасность и безопасность продовольствия: матер. V Национального конгресса «Приоритеты развития экономики: модернизация промышленности России», 2010.

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ УДК 619:616.995.1:636. Г.Н. Абденова, Б.К. Ибраев Казахский агротехнический университет им. С. Сейфуллина, Республика Казахстан, abd2222@list.ru РАСПРОСТРАНЕНИЕ ЭСТРОЗА ОВЕЦ В УСЛОВИЯХ АКМОЛИНСКОЙ ОБЛАСТИ Энтомозы, как и другие оводовые заболевания сельскохозяйственных животных широко распространены [1,2]. Заболевание наносит овцеводству значительный экономический ущерб [3]. Существенным препятствием на пути увеличения поголовья и повышения продуктивности овцеводства является эстроз овец. В РК за последние 12-15 лет в производственных условиях практические ветеринарные врачи диагноз на эстроз чаще всего не ставят. Поэтому вопросы касающиеся, эпизоотологии эстроза и биологии развития носополостного овода для северных регионов Казахстана являются актуальными.

Целью работы является изучение биологии развития носополостного овода и разработка научно-обоснованных сроков проведения ветеринарных мероприятий.

Материалы и методы исследований. Исследования проводили на кафедре ветеринарной медицины КАТУ им. С.Сейфуллина и в 4 сельскохозяйственных формированиях Акмолинской области. Материалами служили: 82 голов овец и 36 головы убитых (павших). Диагностику на эстроз проводили общепринятыми методами прижизненной и посмертной диагностики в пара зитологии, а также с использованием специальных приборов (лапороскоп, эндоскоп).

Результаты исследования. По данным таблицы 1 видно, что распространение эстроза овец в сельхозформированиях Акмолинской области отличаются. Так, в ТОО «Диол» из исследо ванных 26 овец у 9 или 35% оказались больными. В КХ «Коммуна» из 21 исследованных овец зараженными оказались 5 голов 24 овец. В частном секторе п. Косшы из 19 исследованных у 4 голов (21%), в с. Коянды из 16 исследованных у 3 голов (19%) отмечались типичные клини ческие признаки эстроза (рис.1).

Рисунок — Распространение эстроза овец в различных сельхозформированиях Акмолинской области При проведении прижизненой диагностики на эстроз овец применяли приборы лапороскоп (РФ) и эндоскоп (ФРГ).

Рисунок 2. Исследование Рисунок 3. Исследование лапороскопом эндоскопом АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ Необходимо отметить, что при исследовании лапороскопом исследователь должен визу ально проводить осмотр через оптическую трубку и находясь вблизи источника электроэнер гии, тогда как при использовании мобильного эндоскопа, который работает от батареи и на мониторе появляется четкое неискаженное изображение, что облегчает работу специалиста для постановки точного диагноза (рис. 2, 3 и 4).

Рисунок 4. Носовая полость Рисунок 5. Личинки эструс овцы на мониторе в носовой полости При проведении вскрытия 36 голов вынужденно убитых овец установлено, интенсивность инвазии (ИИ) не высокая от 2 до 5 экз. (рис.5).

В условиях северного региона РК массовое выпадение личинок овода отмечаются в мае июне. Лёт овода отмечается 10-13 июня и продолжается при теплой погоде до 5-10 сентября.

Заключение. Экстенсивность инвазии эстроза в условиях Акмолинской области составляет от 19 до 35% при интенсивности инвазии 2-5 экземпляров. Учитывая биологию развития носо полостного овода и с целью не допущения падежа среди овец раннюю химиопрофилактику необходимо проводить в конце сентября в начале октября.

Библиографический список 1. Грунин К.Я. Носоглоточные овода (Oestridae). Афуна СССР. Насекомые двукрылые. — М.-Л., 1957. - изд. АН СССР. — Т.XIX. — Вып.3. — 359с.

2. Шербань Н.Ф. Эстроз овец. — Москва, 1976. — изд.Колос.- 243с.

3. Куничкин Г.И. Насекомые — возбудители и пеносчики болезней сельскохозяйственных животных. — Алма Ата, 1989. — 144с.

УДК 619:616- Н.Б. Алексенко Алтайский государственный аграрный университет, natasha-aleksenk@mail.ru К ВОПРОСУ ПРИМЕНЕНИЯ КИШЕЧНОГО ШВА В ВЕТЕРИНАРНОЙ АБДОМИНАЛЬНОЙ ХИРУРГИИ (КРАТКИЙ ОБЗОР) Операции на полых органах желудочно-кишечного тракта являются одними из наиболее часто проводимых операций в ветеринарной хирургии. Данные операции (гастротомия, або мазотомия, резекция кишечника) отличаются необходимостью создания физически прочного и биологически герметичного анастомоза. Исход операции во многом зависит от техники на ложения кишечного шва и используемого при этом шовного материала.

Нередко причиной летального исхода после проведения операций на полых органах являет ся несостоятельность швов. Как в ветеринарной, так и в медицинской абдоминальной хирургии это проблема остается актуальной и в настоящее время. По данным медицинских хирургов (Яшников В.С., Оренбург, 2008) процент несостоятельности кишечного шва составляет 6-42%.

К сожалению, в ветеринарной практике такая статистика не ведется, хотя на патвскрытии дан ные осложнения выявляются достаточно часто.

Традиционно в ветеринарной хирургии для ушивания ран желудка применяются многоряд ные швы. Такие как: Альберта-Ламбера, Шмидена+Плахотина—Садовского, Шмидена Ламбера, «Елочкой»-Ламбера, Плахотина-Садовского. А ведущие ветеринарные научные журналы (Бернар Бови, 1997;

Жиль Дюпре, Focus, том 7., №3 1997) для закрытия операци онных ран желудка и матки рекомендуют использовать двухрядный шов. Дляушивания перво СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ го ряда применяют сквозной непрерывный инвертированный шов Коннелла (рис.1), а для вто рого ряда-серозно-мышечный шов Ламбера (рис.2) или шов Кушинга. Но в настоящее время доказано, что двухрядные кишечные швы имеют ряд недостатков: нарушение гемостаза, за медление процесса регенерации тканей, образование «тканевого вала» в зоне анастомоза, риск стеноза и вероятность заживления тканей по вторичному заживлению.

Рисунок 1 — Закрытие желудочного разреза Рисунок 2 — Закрытие желудочного разреза швом Коннелла швом Ламбера В научной литературе данные о применении тех или иных швов и шовных материалов в ве теринарной хирургии крайне немногочисленны и часто противоречивы.В настоящее время на ряду с двухрядными швами применяются однорядные швы. По мнению многих медицинских (В.Н. Егиев, 2002;

В.М.Буянов, 2001;

Тимошникова И.В.,2002, Савина В.А.,2003) и ветеринар ных хирургов (П.А. Тарасенко, 2000;

А.С. Кашин,2005;

Л.В. Медведева, 2006) такие швы об ладают рядом преимуществ.

Наиболее известным однорядным кишечным швом является шов Пирогова. Н.И. Пирогов одним из первых доказал важность включения в шов подслизистой оболочки, придающий прочность анастомозу.

В настоящее время разработаны и используются в ветеринарной хирургии более совре менные однорядные кишечные швы. Так, напри мер, П.А. Тарасенко (2000г.) (рис.3) модифициро вал серозно-мышечный шов Садовского-Плахотина, сделав его серозно-мышечно-подслизистым швом.

В этом случае захват подслизистого слоя обеспечи вает прочность шва и более надежную герметиза цию.

На кафедре хирургии и акушерства ФГБОУ ВПО «Алтайский государственный университет» также разработаны и применяются на органах желудочно кишечного тракта у различных видов животных (крупного рогатого скота, овец, коз, кошках, соба ках) кишечные швы: Кашина-Медведевой (рис.4,5), Медведевой (рис 6,7).

Рисунок 3 — Шов Тарасенко Шов Кашина-Медведевой обладает рядом преимуществ: в зоне ушиваемых тканей не на рушается лимфо- и гемоциркуляция, происходит точное сопоставление одноименных слоев ткани, что приводит к формированию минимального раневого рубца и быстрому заживлению по первичному натяжению. Недостатком данного шва является сложность в его исполнение начинающему хирургу.

Для формирования интестинальногоанастомоза на тонком кишечнике Л.В. Медведева (2006) предлагает использовать модифицированный шов Жели (по Л.В. Медведевой). Его ар хитектоника позволяет применять данный шов даже на патологически измененных тканях и приводит к заживлению операционной раны по первичному натяжению в короткие сроки.

Подтверждением этого обстоятельства является работа Ахмеда Шерифа Омара Ахмед Са лемКоритама« Инвагинация кишечника у собак» (Троицк,2011г.).

АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ Рисунок 4 — Шов Кашина-Медведевой Рисунок 5 — Шов Кашина-Медведевой на сычуге у овец Автор экспериментально создавал модель тонко-тонкокишечной инвагинации у собак.

Операцию по восстановлению проходимости кишечника у животных выполняли на 5 день по сле инвагинации. Для создания анастомоза применяли сочетание двухрядного шва (на нижнюю стенку анастомоза) с однорядным швом Л.В. Медведевой (на верхнею стенку анастомоза).

Гистологическим исследование и УЗ-сканированием доказали, что данный способ ушивания анастомозов, несмотря на сложность наложения швов, в связи с наличием патологических изменений в тканях, обеспечивает их состоятельность и минимизирует сужение просвета ки шечника.

Рисунок 6 — Шов Жели (по Л.В. Медведевой) Рисунок 7 — Шов Л.В. Медведевой В настоящее время на кафедрехирургии и акушерства факультета ветеринарной медицины ФГБОУ ВПО «Алтайский государственный университет» проводятся исследования по научному обоснованию возможности применения кишечного шва Кашина-Медведевой на желудке у мелких домашних животных (кошках и собаках), который ранее ограниченно применялся только в клинической практике.

Также в соответствии с планом научных исследований ведется работа по разработке и применению оптимально физиологических способов закрытия операционных ран на внутрен них полых органах, в т.ч. при наличии патоморфологических изменений в сшиваемых тканях, которые будут востребованы в клинической практике.

Одним из вариантов достижения биологической герметичности кишечного шва является разработанный В.Т. Марченко, Н.Н. Прутовых, Г.А. Толстиков, А.Г. Толстиков (2005г.) способ герметизации швов на внутренних органах клеевой композицией «Сульфакрилат». Авторы проводили тщательные морфологические исследования в эксперименте на лабораторных жи вотных (крысы, морские свинки).Авторами доказано, что использование медицинского клея «Сульфакрилат» повышает эффективность операций и снижает частоту послеоперационных осложнений. Но не всегда такой способ, может быть приемлем, т.к. существуют видовые особенности, варианты состояния оперируемого органа на момент хирургического вмеша тельства и прочее.

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ Несмотря на имеющеюся информацию, способы закрытия ран внутренних полых органов до настоящего времени несовершенны. Имеющиеся в научной литературе данные немного численны, нередко противоречивы и часто требуют подтверждения или опровержения их пре имуществ. В связи с этим необходимо проводить дальнейшие исследования в данной области.

Библиографический список 1. Егиев, В.Н. Однорядный непрерывный шов анастомозов в абдоминальной хирургии/ В.Н. Егиев, С. С. Маскин, В.И. Егоров, П.К. Воскресенский;

под ред. В.Н. Егиева. М.: Мед практика -2002. - 100с.

2. Марченко, В.Т. Медицинский клей «Сульфакрилат». Антибактериальная противовоспали тельная клеевая композиция. Руководство для применения в хирургических отраслях / В.Т. Марченко, Н.Н. Прутовых, Г.А. Толстиков, А.Г.Толстиков. Новосибирск, 2005. - с.

3. Медведева, Л.В. Однорядный шов в ветеринарной абдоминальной хирургии: моногра фия / Л.В. Медведева. Барнаул: Изд-во АГАУ,2006. -240 с.

4. Семенов, В.Г.Хирургический шов / В.Г. Семенов, В.Л. Петришин, М.В. Ковшова.

СПб:Питер, 2001. -256с.

5. Черванев, В.А. Шовный материал и швы в ветеринарной практике / В.А. Черванев.

М.:КолосС, 2006. -76с.

УДК 619:618.1:636. А.И. Ашенбреннер, Н.Ю. Беляева, М.Ю. Соколов, С.И. Снигирев, Ю.А. Хаперский Алтайский НИИ животноводства и ветеринарии РАСХН, г. Барнаул, РФ, uax23@mail.ru ИСПЫТАНИЕ ТЕРАПЕВТИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ ПРЕПАРАТА «АРГУМИСТИН»

ПРИ ЗАБОЛЕВАНИЯХ МОЛОЧНОЙ ЖЕЛЕЗЫ, АКУШЕРСКО-ГИНЕКОЛОГИЧЕСКОЙ ПАТОЛОГИИ И ПОРАЖЕНИЯХ КОЖНОГО ПОКРОВА У КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА Достижение высокой рентабельности отрасли молочного скотоводства может быть обес печенно только при разведении высокопродуктивного молочного скота и максимальном ис пользовании его генетического и репродуктивного потенциала. В значительной степени этому препятствуют бесплодие и яловость коров, которые возникают в результате акушерско гинекологических заболеваний[4].

Производственные испытания препаратаАргумистин проводились в ОАО учхоз «Пригород ное» АГАУ г. Барнаул и СПК «Колхоз им. Ленина» Бийского района Алтайского края в зимне стойловый и летне-пастбищный периоды 2013 г.[2].

Использование препарата Аргумистин при терапии маститов. Лечение коров с диагнозом «мастит» проводили у 26 коров черно-пестрой породы, в составе двух групп. В пер вую(опытную) группувключили 16 животных: из них у четырёх зарегистрирован гнойно катаральный мастит, у двух абсцесс вымени и у десяти— катаральная форма мастита. Испы туемый препарат вводили интрацистернально, в больные доли выменипо 10 мл, один раз в сутки после доения.

Во второй (контрольной) группе для оценки сравнительной эффективности использовали препараты Гамарет и Тетра Дельта. Из десяти животных в составе контрольной группы две коровы было с гнойно-катаральным маститом, одна с абсцессом вымени и семь с ката ральным маститом. Вышеназванные препараты вводилиинтрацистернально, в поражённые до ли вымени один раз в два дня, после доения, в количестве 10 мл. Курс лечения в обеих груп пах, проводился до выздоровления животных[3,4].

При лечении коров опытной группы с катаральной формой мастита, курс лечения составил в среднем 34 дня, выздоровление наступило у 100% особей. При гнойно-катаральной форме мастита и абсцессах вымени, длительность лечения составила в среднем 810 дней, реконва лесценция зарегистрирована у 5 животных (83%). Одно животное с множественными абсцес сами вымени было подвергнуто вынужденному убою, так как лечение не дало положительно го эффекта[3].

При лечении коров с диагнозом катаральный мастит в контрольной группе, где применяли противомаститные препараты, курс лечения составил в среднем 46 дней, выздоровление на АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ ступило у 6 животных (85,7%). При гнойно-катаральной форме мастита и абсцессах вымени, длительность лечения составила в среднем 810 дней, выздоровление наступило у одной ко ровы (33%). Двух коров подвергли вынужденной выбраковке вследствие отсутствия терапев тического эффекта.

Использование препарата Аргумистин при терапии эндометритов. С целью определения терапевтической эффективности препарата Аргумистинбыло сформировано 2 опытных груп пы. В первую опытную группу включено 29 животных. Препарат им вводили внутриматочнов дозе 50 мл, с интервалом 48 часов, 3 4 раза, чередуя с аутогемотерапией, до выздоровле ния. Коровам второй опытной группы в количестве 16 голов данный препарат вводили в дозе 70 мл, с интервалом 48 часов, 3 4 раза, до выздоровления. Животным первой и второй групп дополнительно вводили окситоцин на 1, 3, 5-й дни курса лечения. Критериями оценки терапевтического эффекта препарата Аргумистин, служили характер течения послеродового периода у коров и показатели воспроизводительной функции[1,4].

У животных первой опытной группы, где применяли Аргумистин в сочетании с аутогемоте рапией, продолжительность курса лечения составила 68 дней, выздоровление наступило в 93% случаев, все коровы пришли в охоту и были осеменены в среднем через 65 дней после лечения. У животных второй опытной группы, продолжительность лечения составила 68 дней, выздоровление наступило в 65% случаев, коровы пришли в охоту и были осемене ны в среднем через 87 дней после отёла[1].

Использование препарата Аргумистин при лечении кожных ран. Для определения эффек тивности препарата Аргумистин при лечении открытых механических повреждений кожного покрова(ран) сформировали 2 группы животных, по принципу аналогов (опытная и контроль ная). Рваные и резаныераны у животных опытной группы обрабатывали препаратом Аргуми стин 1 раз в сутки, путем орошения раневой поверхности. Животных контрольной группы ле чили аэрозольным препаратом Террамицин Аэрозоль Спрей, согласно инструкции по приме нению 1 раз в 2 дня. Критериями оценки эффективности действия препарата служили про должительность и характер заживления ран[5].

У животных опытной группы на вторые сутки после применения препарата Аргумистин из полости раны уменьшалось выделение гнойного экссудата, отечность вокруг раны, исчезал ихорозный запах, снижалась степень болезненности. На 34 сутки полностью прекращалось выделение экссудата, отмечалась грануляция по всей поверхности раны. Площадь ран сокра щалась в среднем на 0,3 см в сутки. По окружности раны появлялась зона эпителизации. В зависимости от размера раны, заживление полностью завершалось на 56 сутки. Заживление ран происходило по вторичному натяжению[5].

У животных контрольной группы на 45 сутки образовывались грануляции розового цвета по всей поверхности раны, но видимый процесс заживления в сравнении с опытной группой был более длительным. Полное заживление ран по вторичному натяжению наступало в сред нем к 710 дню[5].

Заключение.

1. В результате проведенных производственных испытаний отмечается высокая терапевти ческая эффективность препарата Аргумистин, при гнойно-катаральном мастите и, особенно, при абсцессах вымени. Клиническим наблюдением установлено, что после одно-двух кратно го применения данного препарата, наступало значительное улучшение состояния здоровья животных.

2. Наиболее эффективной схемой лечения эндометрита является применение препарата Аргумистин в сочетании с аутогемотерапией. Использование препарата Аргумистин как ос новного средства лечения, недостаточно эффективно, так как удлиняются сроки выздоровле ния и значительно снижается процент выздоровевших животных, а также происходит переход клинического эндометрита в субклинический.

3. Препарат Аргумистин обладает выраженным терапевтическим эффектом при лечении гнойных ран, сокращает сроки лечения на 24 дня по сравнению с результатами в контроль ной группе.

Библиографический список 1. Гаврилов Б.В. Усовершенствование методов лечения при эндометритах у коров: авто реф. дис. канд. вет. наук./ Б.В. Гаврилов;

Краснодар, 2005- 19 с.

2. Дорожкин В.И. Основные требования предъявляемые к лекарственным средствам вете ринарного назначения / В.И. Дорожкин // Совершенствование методов контроля, стандар тизации и сертификации вет. препаратов: тез.докл. всерос. науч. конф./ М. – 2001. - С.31.

3. Зюбин И.Н. Терапия послеродовых метрита и мастита у коров / И.Н.Зюбин, М.Ф.Зюбина // Тезисы докладов Всесоюзной научной конференции./ Воронеж, 1988. С. 37-38.

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 4. Студенцов А.П. Ветеринарное акушерство, гинекология и биотехника размноже ния/А.П. Студенцов, В.С. Шипилов, В.Я. Никитин и др. — Москва, «Колос», 2000. — 495 с.

5. Фенчин, К.М. Заживление ран / К.М. Фенчин. Киев: Здоровье, 1979. - 168 с.

УДК 636.127.2. С.Х. Балова, М.А. Шухов, М.Ф. Карашаев Кабардино-Балкарский государственный аграрный университет им. В.М. Кокова, РФ, Karashaev59@mail.ru О ДЕЯТЕЛЬНОСТИ ДЫХАТЕЛЬНОЙ СИСТЕМЫ ПРИ ГИПОКСИИ Заболевание крупного рогатого скота, называемое «Brisket disease» - горная болезнь, из вестно с 1889 года [2,3,4]. Было отмечено, что возникновение горной болезни связано с не достатком кислорода на большой высоте. Признаки болезни сводятся к увеличению количест ва эритроцитов, нарушению обмена электролитов, сгущению объёма циркулирующей крови и аноксемическому поражению миокарда [5].

Цель наших исследований — изучить реакцию дыхания телят на уменьшение парциального давления кислорода во вдыхаемом воздухе. Исследования проводили на телятах 5- дневного возраста швицкой породы.

Материалы и методы. Для определения показателей дыхания использовали волюметр «Veb medizintehnik» и газоанализатор «Малыш». Альвеолярную вентиляцию и физиологическое мёртвое дыхательное пространство вычисляли по формуле Бора. Газовую смесь получали аппаратом «Гипоксикатор» - конвертирующего окружающий воздух в гипоксическую газовую смесь с заданным содержанием кислорода.

Результаты. Обследованные телята были разделены на 4 группы. Изучаемые клинические и гематологические показатели животных 1-й и 2-й группы были в пределах физиологической нормы. Показатели телят 3-й группы находились на нижней границе физиологической нормы.

У телят 4-й группы наблюдалась выраженная железодефицитная анемия [1].

Исследование изменений дыхания телят проведено в нормобарических условиях во время вдыхания гипоксической смеси с пониженным содержанием кислорода. Они показали, что при кратковременном десятиминутном вдыхании воздуха с 16, 14, 12 и 10% кислорода у те лят 5-ти дневного возраста увеличивается частота дыхания.

Возрастание частоты дыхания является закономерной реакцией организма на недостаток кислорода во вдыхаемом воздухе, за счёт которого усиливается и лёгочная вентиляция. При вдыхании воздуха с 16% кислорода частота дыхания возрастает у больных железодефицитной анемией в 1,5 раз по сравнению с её физиологическими значениями, а при вдыхании воздуха с 10% кислорода — в 2,4 раза. Снижение содержания кислорода во вдыхаемом воздухе спо собствует постепенному увеличению дыхательного объёма (ДО) у здоровых телят. При вды хании воздуха с 10% кислорода дыхательный объём уменьшается по сравнению с его величи ной при вдыхании гипоксической смеси с 12% кислорода и становится в 1,2 меньше, чем в нормоксических условиях. У телят, больных железодефицитной анемией при вдыхании возду ха с 12% кислорода дыхательный объём уменьшается и продолжает снижаться при вдыхании гипоксической смеси с 10% кислорода.

Минутный объём дыхания увеличивается при вдыхании воздуха с 16, 14, 12% кислорода, дыхание гипоксической смесью с 10% кислорода вызывает возрастание величины минутного объёма дыхания у здоровых в 1,99 раза, а у больных железодефицитной анемией телят в 1,58 раз по сравнению с нормоксическими значениями. Увеличение минутного объёма дыха ния при вдыхании гипоксических смесей у телят 3-й и 4-й группы, происходило за счёт увели чения частоты дыхания, а не дыхательного объема, который начинает уменьшаться при вды хании гипоксической смеси с 12% кислорода, в отличие от здоровых телят.

Снижение содержания кислорода во вдыхаемом воздухе до 12% обусловливает повыше ние физиологического мёртвого дыхательного пространства (ФМДП) у телят, вызванное уве личением дыхательного объёма. При вдыхании газовой смеси, содержащей 10% кислорода, у телят 1-й, 2-й и 3-й группы, проявляется тенденция к уменьшению ФМДП. У больных железо дефицитной анемией телят вдыхание гипоксической смеси с 10% кислорода не приводит к уменьшению ФМДП из-за низкой альвеолярной вентиляции и высокой частоты дыхания.

Отношение альвеолярной вентиляции к минутному объёму дыхания уменьшается по срав нению с данными, полученными при вдыхании здоровыми и больными железодефицитной АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ анемией телятами воздуха, содержащего 20,9% кислорода, что указывает на снижение эф фективности внешнего дыхания при гипоксии.

Потребление кислорода (ПО2) при гипоксии снижается, несмотря на увеличение минутного объёма дыхания. При вдыхании больными железодефицитной анемией телятами воздуха с 12% кислорода, этот показатель становится в 6 раз меньше, чем при нормоксии.

Сопоставление функциональных затрат и потребления кислорода позволяет сделать вывод о том, что экономичность дыхания телят 5-ти дневного возраста уменьшается по мере возраста ния степени гипоксии. Об этом свидетельствует увеличение вентиляционного эквивалента.

Наиболее резкое изменение этого показателя отмечается при вдыхании телятами воздуха с 12% кислорода и ниже. Для извлечения 1 литра кислорода здоровым телятам необходимо 115,63±0,49 л гипоксической газовой смеси, тогда как телятам 4-й группы для этого нужно 310,40±5,28 литра.

Минутный объём дыхания увеличивается при вдыхании воздуха с 16, 14, 12% кислорода у здоровых телят благодаря увеличению дыхательного объёма, у больных анемией телят за счёт учащения частоты дыхания. Потребление кислорода у больных железодефицитной ане мией в 6 раз меньше чем при нормоксии при вдыхании гипоксической смеси с 12% кислоро да. Снижение эффективности дыхания начинается у больных железодефицитной анемией те лят при вдыхании воздуха с 16% кислорода, у здоровых телят при вдыхании воздуха с 12% кислорода.

Библиографический список 1. Абрамов, С.С. Латентная железодефицитная анемия у телят / С.С. Абрамов, С.В. За синец // Ветеринария, 2004. - № 6. — С. 43-45.

2. Баев Г.М. Хроническая горная болезнь крупного рогатого скота / Г.М. Баев // Сель ское хозяйство Киргизии. — 1968, № 8. — С. 33-36.

3. Горная болезнь животных / В.М. Митрофанов, [и др.]. - «Кыргызстан», Фрунзе, 1977, 100 с.

4. Ласков, А.А. Влияние острой гипоксии на крупных животных / А.А. Ласков // Сель скохозяйственная биология. — 1971. — Т. VI, № 2. — С. 52-54.

5. Митрофанов, В.М. Патологоанатомические изменения у крупного рогатого скота при хронической горной болезни / В.М. Митрофанов // Труды Киргизского сельскохозяйствен ного института им. К.И. Скрябина, 1970. — Выпуск 15. - Т. 3. — С. 61-64.

УДК 636:082. И.В. Бирюков Горно-Алтайский государственный университет, РФ ИЗМЕНЕНИЕ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ ПРИ ВВЕДЕНИИ ЭКСТРАКТА СОЛОДКИ ТЕЛЯТАМ Лекарственное растение — солодка голая (русский солодковый корень, бурьян, солодкий корень, солодковый корень, сладкий корень, солодик) применяется в ветеринарной практике, в виде настоев и отваров, при заболеваниях верхних дыхательных путей. Действие экстрактов лекарственных растений обусловлено биологически активными веществами [1].

Безвредность препаратов является условием для их производства, вследствие этого необ ходима оценка действия экстракта лекарственного растения.

Цель работы — изучение морфобиохимических показателей при внутривенном введении препарата на основе экстракта солодки голой.

Материалы и методы. Для проведения опыта в хозяйстве, телят подбирали по принципу групп-аналогов с учетом клинико-физиологического состояния, породы, возраста, пола и мас са тела. Кормление животных проводили по рационам принятым в хозяйстве. Было сформи ровано две группы: контрольная и опытная, по 5 животных в каждой в возрасте 1,5-2 мес.

Животным опытной группы внутривенно 1 раз в сутки в течение 8 дней вводили препарат из экстракта солодки голой (из расчета 20 мг сухого вещества на 1 кг массы тела, разведенного стерильной дистиллированной водой до 10 мл). Животным контрольной группы применяли аналогично стерильную дистиллированную воду. Клинико-физиологические, гематологические и биохимические показатели у телят определяли до и после опыта (табл.).

Результаты исследований. Температура тела, частота пульса и дыхание у телят сравнивае мых групп на протяжении исследований находились в пределах физиологической нормы.

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ Таблица — Морфобиохимические показатели крови телят при внутривенном введении экстракта из корня солодки до опыта после опыта Показатели контр. опытная контр. опытная Эритроциты,1012/л 8,26±0,2 7,92±0,5 8,35±0,6 7,83±0, Гемоглобин, г% 11,93±0,5 11,53±1 12,13±0,1 14,6±0, Лейкоциты, 109/л 9,03±0,8 7,72±0,45 8,88±0,35 4,76±0, Палочкоядерные,% 2±1,00 3±0,79 1,5±0,7 3±0, Сегментоядерные,% 14±0,7 15±1 13±0,55 14±0, Эозинофилы,% 3±0,6 4±0,5 3±0,6 3±0, Моноциты,% 4±0,2 6±0,15 4,5±0,7 6±0, Лимфоциты,% 77±1,5 72±2 78±2 74±1, Общий белок, г/л 67,84±1,5 60,5±0,7 73,89±1,6 62,56± Альбумины,% 34,96±0,5 62,05±0,7 47,84±0,1 54,64±0, Альфа-глобулины,% 24,44±0,5 7,94±0,35 11,24±0,7 9,28±0, Бета-глобулины,% 25,42±1,1 17,94±1,8 23,44±1,2 24,31± Гамма-глобулины,% 15,16±0,4 12,05±1 17,46±0,7 11,74±0, У животных опытной группы согласно данным таблице, по сравнению с показателями до применения после опыта увеличилось содержание гемоглобина на 26,6%, а эритроцитов и лейкоцитов снизилось на 1,13 и 38,3%, соответственно. Сравнивая показатели крови с кон трольной группой, установили, что после опыта возросло количество гемоглобина на 24,9%, а эритроцитов и лейкоцитов снизились на 2,21 и 36,6%, соответственно.

По данным лейкограммы в опытной группе относительно первоначальных данных после опыта количество лимфоцитов повысилось на 2,7%, а сегментоядерных и эозинофилов снизи лось на 6,6 и 25%, соответственно, палочкоядерные и моноциты остались на прежнем уров не. По сравнению с контрольной группой после опыта количество палочкоядерных, сегмен тоядерных и лимфоцитов больше на 25;

0,54 и 1,48%, а эозинофилов и моноцитов уменьши лось на 25 и 12,5%, соответственно.

В сыворотки крови у животных опытной группы относительно исходных данных после опыта содержание общего белка, альфа- и бета-глобулинов повысилось на 3,3;

16,8 и 35,5%, а аль буминов и гамма-глобулинов понизилось на 11,9 и 2,57%, соответственно. По сравнению с контрольной группой наблюдались следующие различия: после опыта количество альфа- и бета-глобулинов увеличилось на 70,8 и 43,2%, а общего белка, альбуминов и гамма глобулинов понизилось на 5,6;

48,7 и 17,6%, соответственно.

По результатам опыта в контрольной группе из биохимических показателей отмечали по ниженное содержание альбуминов и повышенное альфа-глобулинов, но в конце опыта про изошла нормализация показателей.

Таким образом, проведенные исследования выявили вариацию морфобиохимических пока зателей относительно контроля, но все изменения оказались в пределе физиологической нормы животных.

Заключение. Препарат из экстракта солодки голой не вызывает изменений в составе крови и является безвредным в данной дозе.

Библиографический список Рабинович М.И. Лекарственные растения в ветеринарной практике: Справочник. - М.: Аг ропромиздат, - 1987. — 288 с.

УДК 636:082. И.В. Бирюков Горно-Алтайский государственный университет, РФ ИЗМЕНЕНИЕ ПОКАЗАТЕЛЕЙ КРОВИ ПРИ ВВЕДЕНИИ ЭКСТРАКТА МАТЬ-И-МАЧЕХИ ТЕЛЯТАМ Лекарственное растение — мать-и-мачеха обыкновенная применяется в ветеринарной прак тике, в виде настоев и сборов, при заболеваниях верхних дыхательных путей. Действие экс трактов лекарственных растений обусловлено биологически активными веществами [1].

АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ Безвредность препаратов является условием для их производства, вследствие этого необ ходима оценка действия экстракта лекарственного растения.

Цель работы — изучение морфобиохимических показателей при внутривенном введении препарата на основе экстракта мать-и-мачехи.

Материалы и методы. Для проведения опыта в хозяйстве, телят подбирали по принципу групп-аналогов с учетом клинико-физиологического состояния, породы, возраста, пола и мас са тела. Кормление животных проводили по рационам принятым в хозяйстве. Было сформи ровано две группы: контрольная и опытная, по 5 животных в каждой в возрасте 1,5-2 мес.

Животным опытной группы внутривенно 1 раз в сутки в течение 8 дней вводили препарат из экстракта мать-и-мачехи (из расчета 20 мг сухого вещества на 1 кг массы тела, разведенного стерильной дистиллированной водой до 10 мл). Животным контрольной группы применяли аналогично стерильную дистиллированную воду. Клинико-физиологические, гематологические и биохимические показатели у телят определяли до и после опыта (табл.).

Результаты исследований. Температура тела, частота пульса и дыхание у телят сравнивае мых групп на протяжении исследований находились в пределах физиологической нормы.

Таблица — Морфобиохимические показатели крови телят при внутривенном введении экстракта из мать-и-мачехи до опыта после опыта Показатели контр. опытная контр. опытная Эритроциты,1012/л 8,26±0,2 8,59±0,7 8,35±0,6 8,64±0, Гемоглобин, г% 11,93±0,5 13±1 12,13±0,1 14,06±1, Лейкоциты, 109/л 9,03±0,8 7,5±0,58 8,88±0,35 7,72±0, Палочкоядерные,% 2±1,00 4±0,65 1,5±0,7 2±0, Сегментоядерные,% 14±0,7 13±1,2 13±0,55 11±0, Эозинофилы,% 3±0,6 1,3±0,43 3±0,6 1±0, Моноциты,% 4±0,2 5,6±0,5 4,5±0,7 8±0, Лимфоциты,% 77±1,5 76±2,3 78±2 78±1, Общий белок, г/л 67,84±1,5 74,92±1,2 73,89±1,6 75,28±1, Альбумины,% 34,96±0,5 37,89±0,4 47,84±0,1 39,8±0, Альфа-глобулины,% 24,44±0,5 8,87±0,4 11,24±0,7 5,15±0, Бета-глобулины,% 25,42±1,1 30,93±1,3 23,44±1,2 26,3±0, Гамма-глобулины,% 15,16±0,4 22,3±0,7 17,46±0,7 28,62±0, Кальций, ммоль/л 2,34±0,18 1,82±0,25 1,72±0,29 2,13±0, Каротин, мг% 0,56±0,05 0,59±0,04 0,62±0,04 0,7±0, Фосфор, ммоль/л 2,6±0,09 2,3±0,12 2,78±0,07 2,64±0, Глюкоза, ммоль/л 1,25±0,08 1,08±0,05 0,93±0,09 1,4±0, Щелочная фосфотаза, нмоль/ (с • л) 500±36 800±38 542±10 674,9± АСТ, ммоль (ч л) 1,25±0,07 1,29±0,08 1,6±0,12 1,34±0, АЛТ, ммоль (ч л) 0,57±0,02 0,75±0,03 0,85±0,08 0,65±0, У животных опытной группы согласно данным таблицы, по сравнению с показателями до применения, после опыта увеличилось содержание гемоглобина, эритроцитов и лейкоцитов на 8,1;

0,5 и 2,9%. Сравнивая показатели крови с контрольной группой, установили, что после опыта возросло количество гемоглобина и лейкоцитов на 6,4 и 4,6%, а эритроцитов снизилось на 0,5%, соответственно.

По данным лейкоцитарной формулы в опытной группе относительно первоначальных дан ных после опыта количество моноцитов и лимфоцитов повысилось на 41,3 и 2,63%, а палоч коядерных, сегментоядерных и эозинофилов снизилось на 50;

15,3 и 24,8%, соответственно.

По сравнению с контрольной группой после опыта количество моноцитов и лимфоцитов стало больше на 28,8 и 1,3%, а палочкоядерных, сегментоядерных и эозинофилов уменьшилось на 25;

8,2 и 24,8%.

В сыворотки крови у животных опытной группы относительно исходных данных после опы та, содержание общего белка, альбуминов и гамма-глобулинов повысилось на 0,48;

5,2 и 28,3%, а альфа- и бета-глобулинов понизилось на 41,9 и 14,8%. По сравнению с контрольной группой наблюдались следующие различия: после опыта количество альфа- и гамма глобулинов увеличилось на 12 и 13,1%, а общего белка, альбуминов и бета-глобулинов пони зилось на 8,4;

31,5 и 7%, соответственно.

Содержание в сыворотке крови по сравнению с первоначальными данными после опыта количество: кальция, каротина, фосфора, глюкозы и АСТ повысилось на 17;

18,6;

14,7;

29,6 и 3,87%, а щелочной фосфатазы и АЛТ понизилась на 15,6 и 13,3%. По сравнению с контроль ной группой после опыта увеличилось количество кальция, каротина, фосфора и глюкозы на СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ 43,5;

7,9;

7,8 и 55,2%, а щелочной фосфатазы, АСТ и АЛТ снизилось на 24;

24,1 и 62,4%, соответственно.

По результатам опыта в контрольной группе из биохимических показателей отмечали по ниженное содержание альбуминов и повышенное альфа-глобулинов, но в конце опыта про изошла нормализация показателей.

Таким образом, проведенные исследования выявили вариацию морфобиохимических пока зателей относительно контроля, но все изменения оказались в пределе физиологической нормы животных.

Заключение. Препарат из экстракта мать-и-мачехи не вызывает изменений в составе крови и является безвредным в данной дозе.

Библиографический список Рабинович М.И. Лекарственные растения в ветеринарной практике: Справочник. - М.: Аг ропромиздат, - 1987. — 288 с.

УДК 619:614.31:637. Н.Е. Борисенко, О.В. Кроневальд Алтайский государственный аграрный университет, РФ К ВОПРОСУ O ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНОЙ ОЦЕНКЕ МЯСА, ПОЛУЧЕННОГО ПРИ УБОЕ БОЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ Эта работа преследует цель поднять давно назревший вопрос о защите населения (потре бителей) от недоброкачественной и опасной продукции животного происхождения, а точнее мяса, полученного от больных животных в результате так называемого «вынужденного убоя».

В практике осуществления ветеринарно-санитарной экспертизы продуктов убоя животных ветспециалистам довольно часто приходится иметь дело с мясом животных, тяжело больных болезнями самой разнообразной этиологии, при этом в своей работе они руководствуются основополагающим по этому вопросу документом «Правилами ветеринарного осмотра убой ных животных и ветсанэкспертизы мяса и мясопродуктов», которые утверждены в 1983 году с изменениями и дополнениями в 1989 г. Названные «Правила» давно уже не отвечают требо ваниям времени, а также букве и духу таких федеральных законов РФ как законы «О защите прав потребителей» (1996 г.), «О качестве и безопасности пищевых продуктов» (2003 г.), «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения (1999) [1,2,3].

Названные «Правила» были разработаны и утверждены при другой общественно политической системе, на принципах приоритета интересов государства над интересами чело века. Преследовалась задача максимально использовать для пищевых целей в экономических интересах без ограничений, на общих основаниях даже продукты убоя от больных животных, наряду с мясом от здоровых.

При рыночных отношениях выше названные законы защищают интересы потребителя от неумеренных «интересов» частного производителя, поэтому «Правила» должны соответство вать этим законам.

Без ограничений может быть выпущено только мясо от здоровых животных. Однако, даже в этом случае полной гарантии безопасности для покупателя мяса дать нельзя, учитывая несо вершенство методов предубойной и послеубойной диагностики болезней животных. Продукты же убоя животных, больных как заразными, так и незаразными болезнями всегда потенци ально опасны для здоровья человека.

Какую же опасность для потребителя могут представлять продукты убоя больных жи вотных, что они в себе могут содержать опасного для здоровья и неприемлемого для поку пателя с санитарно-гигиенической и психологической точек зрения?

Мясо и другие продукты, полученные при убое больного животного могут содержать в себе:

- возбудителей инфекционных или инвазионных заболеваний опасных для человека и живот ных;

- возбудителей пищевых токсикоинфекций и токсикозов среди населения;

- пестициды, антибиотики, ядохимикаты, медикаменты;

- продукты гнилостного распада тканей, токсичные по своей природе и отрицательно влияющие на пищевые достоинства продукта;

АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ - мясо может быть получено от животного в состоянии агонии, которое содержит в себе не выведенные из организма «шлаки» из-за нарушений всех его функций;

- продукты убоя могут иметь визуально невидимые патологоанатомические изменения;

- продукты убоя от больного животного могут быть неприемлемыми для пищевых целей для многих покупателей с психологической точки зрения;

исторически у всех племен и наро дов сформировалась подсознательная брезгливость к мясу от павших животных, а мясо от тяжело больного животного по своей сути и содержащихся в нем опасных и вредных факто ров почти соответствует мясу от трупа животного;

- согласно статистических данных 85% пищевых отравлений бактериальной этиологии среди населения приходится на долю мяса, полученного при вынужденном убое животных;

- названные продукты имеют низкое пищевое и вкусовое качество;

мясо от больного жи вотного биологически неполноценно как пищевой продукт и от него организм потребителя может получить больше вреда, чем пользы.

Между тем, действующие «Правила» [4] в целом ряде случаев рекомендуют выпускать продукты убоя больных животных без ограничения не только при незаразных болезнях, но и при инфекционных и паразитарных, даже без требований бактериологического исследования на обсемененность возбудителями пищевых токсикоинфекций и токсикозов.


Так «Правила ветсанэкспертизы» [4] разрешают выпускать без ограничений, на общих ос нованиях туши от положительно реагирующих животных на туберкулин, в тех случаях, если при послеубойном исследовании не обнаруживаются патологические изменения в органах и тканях, свойственные туберкулезу. Однако хорошо известно, что в боенской практике, осо бенно при конвейерной переработке скота, времени на детальное обследование органов не достаточно и квалификация ветработников, осуществляющих послеубойный ветосмотр на убойном конвейере нередко бывает низкой.

И.А.Кондратьев (1972) на основании литературных данных и собственных исследований ус тановил, что возбудитель туберкулеза у крупного рогатого скота, положительно реагирую щего на туберкулин, обнаруживается во внутренних органах и тушах при отсутствии клиниче ских признаков и видимых патологических изменений. При латентной форме туберкулеза ми кобактерии обнаружились в 10, а при локальной в 20% случаев. А при изучении степени об семенения мышечной ткани возбудителем он обнаруживал до 2 тысяч микобактерий туберку леза в 1 г. мяса. Поэтому он еще в 1971 г. Предлагал ужесточить санитарную оценку мяса при туберкулезе.

Без ограничения названые «Правила» [4], также разрешают выпускать туши: пораженные псевдотуберкулезном внутренних органов и региональных лимфаузлов;

туши к.р.с. и свиней от животных, положительно реагирующих на бруцеллез, но при отсутствии у них клинических признаков бруцеллеза, или патизменений в мышцах и внутренних органах;

туши и внутренние органы при инфекционном атрофическом рините свиней, если в них нет дегенеративных из менений;

при доброкачественной форме оспы — туши и внутренние органы;

туши — при мест ном поражении зева, носа, гортани, внутренних органов, или конечностей некробактериозом;

туши и органы от животных, положительно реагирующих при гематологическом исследовании на лейкоз;

туши и органы при ценурозе, саркоцистозе;

при единичных доброкачественных опухолях и др.

Что же касается санитарной оценки туш при незаразной патологии в таких органах как:

легкие, сердце, печень, селезенка, почки, желудок, кишечник и вымя, то в «Правилах ветсан экспертизы» [4] даются рекомендации по санитарной оценке названных органов при той или иной патологии, а о санитарной оценке туш при этом ничего не говорится. Между тем как, незаразная патология во внутренних органах широко распространена, а степень поражения органов различна. При обширных поражениях внутренних органов, как известно, туши в зна чительной степени подвергаются интравитальному обсеменению микрофлорой, вызывающей пищевые токсикоинфекции и токсикозы.

Следовательно, без бактериологического исследования мяса выпускать его в свободную реализацию, под видом мяса здоровых, это значит скрывать от потребителя правду о том, что мясо получено все-таки от больных животных, тем самым подвергать риску здоровье по требителя, нарушая тем самым закон «О защите прав потребителя». [1] Если логически проанализировать все пункты «Правил ветсанэкспертизы», в которых мясо разрешается выпускать без ограничения с точки зрения выше перечисленных санитарно гигиенических принципов, не допускающих наличия в мясе неприемлемых для пищевого про дукта факторов, то не трудно прийти к выводу, что «Правила ветсанэкспертизы» [4] не обес печивают безопасность и высоких пищевых достоинств продуктов убоя.

Выпускаемое в реализацию мясо от больных животных без ограничений, на общих основа ниях приравнивается к биологически полноценному, качественному и безопасному названно СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ му продукту от здоровых животных. Не владея информацией, о том что мясо от больного животного потребитель приобретает его, как мясо от здорового животного.

Если бы покупатели имели полную информацию о продукте, то многие из них отказались бы от него, а если бы и купили, то по гораздо более низкой цене, что соответствует рыноч ным отношениям.

Получается, что от потребителя скрыта очень важная информация. Между тем как, на званные выше законы РФ требуют от производителя (продавца) предоставления потребителю полной информации о продукции, тем более такой важной для него, что продукция изготов лена из мяса больных животных.

На основании вышеизложенного предлагаем пункты 3.1.4.2. изложить в следующей редак ции:

«туши всех видов животных нормальной упитанности при наличии туберкулезного пораже ния в лимфатическом узле, в одном их внутренних органов или других тканях, а также непо раженные органы направляют на выработку мясных хлебов, консервов, или проварку с со блюдением требований раздела 11., наружный и внутренний жир перетапливают. Поражен ные туберкулезом органы независимо от формы поражения направлять в утилизацию».

Пункт 3.1.4.3. изъять из «Правил» [4] полностью.

Пункт 3.1.4.5. изложить в следующей редакции: «с продуктами убоя животных, положи тельно реагирующих на туберкулин и при необнаружении туберкулезных поражений в орга нах и тканях поступают согласно пункту 3.1.4.2».

В пункте 3.1.5. — псевдотуберкулез, последний абзац изложить в следующей редакции:

«при отсутствии истощения и наличии поражений только во внутренних органах или лимфати ческих узлах, внутренние органы направляют на утилизацию, а мясо подлежит бактериологи ческому исследованию и с ним поступают согласно пункту 11.3 или 11.5».

Во второй абзац пункта 3.1.8. — бруцеллез — внести следующие изменения: слова «выпус кают без ограничений» заменить словами: «подлежит промпереработке на вареные колбас ные изделия в обычном режиме».

В пункте 3.1.12. — инфекционный атрофический ринит — последнее предложение изложить в следующей редакции: «с тушей и внутренними органами после бактериологического иссле дования на обсемененность возбудителями пищевых токсикоинфекций и токсикозов поступа ют согласно пункту 11.3 или 11.5».

В пункте 3.1.22. — некробактериоз — в первом предложении вместо слов: «тушу выпуска ют без ограничений» написать: «с тушей после бактериологического исследования поступают согласно пункту 11.3 или 11.5» и далее по тексту.

В пункте 3.1.26.3. — лейкоз — последние слова в предложении — «выпускают без ограниче ний» заменить словами: «перерабатывают на вареные колбасные изделия в обычном режи ме».

В пункте 3.2.11. — ценуроз — последние слова: «выпускают без ограничений» заменить словами: «подвергают бактериологическому исследованию и поступают с ними согласно пункта 11.3 или 11.5».

Пункт 3.2.12. — саркоцистоз — изложить в следующей редакции: «при обнаружении в мышцах саркоцист, но при отсутствии в них патологических изменений тушу и органы подвер гают промпереработке на вареные колбасные изделия в обычном режиме».

Пункты, начиная от 3.4.1. — легкие, и заканчивая 3.4.8. — вымя, в которых определена са нитарная оценка внутренних органов и вымени при различных патологических процессах, в конце каждого из них дополнить рекомендациями по санитарной оценке туш и непораженных органов в зависимости от степени поражения соответствующего органа, характера патологи ческого процесса и патологических изменений в региональных лимфаузлах, примерно в сле дующей редакции: «тушу при обширном поражении органа и при обнаружении изменений в лимфаузлах пораженного органа подвергают бактериологическому исследованию и поступа ют с тушами и непораженными органами согласно пункту 11.3. или 11.5». [3] В действующих «Правилах ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов» [4] имеются на наш взгляд и другие недос татки с точки зрения современных требований.

Вывод — положение, когда действующие до настоящего времени «Правила ветеринарного осмотра убойных животных и ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясопродуктов» не соответствуют целому ряду федеральных законов, регламентирующих качество и безопас ность пищевых продуктов, является нетерпимым, названный документ должен быть карди нально переработан и отвечать реалиям времени.

Библиографический список 1. Закон РФ «О защите прав потребителей» от 9 января, 1996 г., № 2 Ф-3.

АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ 2. Закон РФ «О качестве и безопасности пищевых продуктов» принят госдумой 1.12.1999, одобрен советом федерации 23.12.1999.

3. Закон РФ «О санитарно-эпидемиологическом благополучии населения» от 1999 г.

4. Правила ветеринарного осмотра убойных животных и ветсанэкспертизы мяса и мясо продуктов. Москва. ВО — Агропромиздат, 1988.

УДК 619:615. Е.М. Василевская, В.В. Великанов, А.А. Малков Витебская государственная академия ветеринарной медицины, Республика Беларусь vasiliska77-32@mail.ru ОСТРАЯ И ХРОНИЧЕСКАЯ ТОКСИЧНОСТЬ ПРЕПАРАТА ИЗ ДИАТОМОВЫХ ВОДОРОСЛЕЙ Введение. Среди всех патологий сельскохозяйственных животных, обусловленных наруше нием технологий содержания и кормления, наибольший удельный вес занимают незаразные болезни молодняка. При этом на одно из первых мест по частоте, массовости и величине экономического ущерба выходят болезни пищеварительной системы у свиней, в частности болезни сопровождающиеся синдромом интоксикации.

Эффективность широко применяемых в ветеринарной практике препаратов, снимающих явления токсикоза, довольна низка, при этом большинство из них вводятся внутривенно, что весьма затруднено в отношении свиней.

Исходя из выше изложенного, весьма актуальной является разработка новых способов ле чения животных, при болезнях пищеварительной системы сопровождающихся синдромом ин токсикации, которые явились бы более эффективными, менее дорогостоящими и технологич ными по применению. Из их многообразия наиболее перспективным является энтеросорбция.

Этот способ физиологичен, не вызывает осложнений у свиней, не требует значительных ма териальных затрат, легко увязывается с технологией содержания и кормления свиней, то есть удобен в применении.


Широкое использование в ветеринарной медицине энтеросорбентов для лечения свиней при острых и хронических заболеваниях, сопровождающихся токсикозами, с целью преду преждения интоксикации той или иной природы, позволит повысить эффективность лечебно профилактических мероприятий и вероятность получения экологически более чистой свинины, поскольку энтеросорбенты будут выводить из организма животных вещества, ухудшающие биологическую ценность и качество мяса. В этом отношении изучение эффективности препа рата из диатомовых водорослей и разработка методики его использования, при данных пато логиях, являются весьма перспективными. Наряду с терапевтической эффективностью препа рата, мы изучали его безвредность, а именно острую и подострую токсичность.

Материалы и методы исследований. Опыты по изучению острой и хронической токсично сти препарата проводили на белых крысах в соответствии с «Методическими указаниями по токсикологической оценке новых лекарственных препаратов для лечения и профилактики не заразных болезней животных» [3]. Исследования проводили в лабораториях кафедр клиниче ской диагностики и фармакологии и токсикологии УО «Витебская ордена «Знак Почета» госу дарственная академия ветеринарной медицины».

Для определения острой токсичности препарата из диатомовых водорослей были созданы 5 групп белых крыс обоего пола массой от 100 до 150 граммов по 10 животных в группе.

Лабораторные животные (собственного воспроизводства) поступили из вивария УО ВГАВМ.

Животным первой подопытной группы препарат задавали внутрижелудочно на 2%-м растворе крахмала из расчета 0,3 г/кг в течение 14 дней за 2 часа до кормления. Животным второй подопытной группы препарат задавали внутрижелудочно из расчета 0,9 г/кг за 2 часа до кормления на 2%-м растворе крахмала в течение 14 дней. Животным третьей подопытной группы препарат задавали внутрижелудочно из расчета 1,5 г/кг на 2%-м растворе крахмала в течение 14 дней за 2 часа до кормления. Животным четвертой подопытной группы препарат задавали внутрижелудочно из расчета 2,1 г/кг за 2 часа до кормления в течение 14 дней.

Животным пятой подопытной группы внутрижелудочно задавали только 2%-й раствор крахма ла. Терапевтическая доза 0,3 г/кг была определена экспериментально из расчета наиболее низкой дозы, оказывающей равный терапевтический эффект у больных гастроэнтеритом жи вотных (поросят), а поскольку препарат из диатомовых водорослей не всасывается из желу СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ дочно-кишечного тракта, то это говорит и о невозможности его кумуляции в организме. Че рез 14 дней после начала применения препарата из диатомовых водорослей провели диагно стический убой животных всех групп, с проведением патологоанатомических и гистологиче ских исследований внутренних органов (печень, почки, кишечник).

Для изучения хронической токсичности препарата из диатомовых водорослей были созданы 5 групп крыс обоего пола массой от 100 до 150 граммов по 10 животных в каждой группе.

Лабораторные животные (собственного воспроизводства) поступили из вивария УО ВГАВМ.

При выборе доз учитывали ранее проведенные нами исследования, доказавшие, что эффект от применения доз в 0,3;

0,5;

1 г/кг массы тела животного является идентичным, поэтому для проведения исследования по хронической токсичности терапевтической была выбрана до за, составляющая 0,3 г/кг массы животного.

Крысам первой подопытной группы препарат задавали вместе с комбикормом из расчета 0,3 г/кг в течение 30 дней. Крысам второй подопытной группы препарат задавали вместе с комбикормом из расчета 0,9 г/кг в течение 30 дней. Крысам третьей подопытной группы препарат задавали вместе с комбикормом из расчета 1,5 г/кг в течение 30 дней. Крысам четвертой подопытной группы препарат задавали вместе с комбикормом из расчета 2,1 г/кг в течение 30 дней. Крысам пятой подопытной группы задавали только комбикорм.

Все животные, принимавшие участие в исследовании, находились в идентичных условиях кормления и содержания. Кормление осуществлялось 1 раз в день в 16:00 ежедневно комби кормом КДС 11 с соответствующим добавлением препарата в описанных выше дозах. При даче препарата комбикорм тщательно измельчали, после чего добавляли исследуемый пре парат, полученную смесь перемешивали, затем добавляли воду до кашеобразной консистен ции. Через 30 дней после начала применения препарата провела диагностический убой живот ных всех групп, с проведением патологоанатомических и гистологических исследований внут ренних органов (печень, почки, кишечник).

Результаты исследований. В результате исследований было установлено, что препарат из диатомовых водорослей не оказывал негативного влияния на клиническое состояние белых крыс. Об этом свидетельствовали клинические признаки животных и показатели клинического статуса. Белые крысы были подвижны, охотно принимали корм и воду, акт дефекации и мо чеиспускания у них также не был нарушен. Показатели клинического статуса не претерпевали значительных изменений на протяжении всего периода опыта.

Заключение. Согласно гигиенической классификации пестицидов по основным параметрам вредности (Л.И. Медведь, Ю.С. Каган, Е.И. Спыну, 1986), по степени токсичности при введе нии в желудок препарат из диатомовых водорослей относится к 4 группе — вещества мало токсичные (ЛД50 более 1000 мг/кг).

Библиографический список 1. Абрамов С.С., Лапина В.А., Великанов В.В. Применение средств эфферентной терапии в комплексном лечении поросят, больных токсической гепатодистрофией. Ветеринарная ме дицина Белоруссии №1, 2003. — С. 24-25.

2. Великанов, В.В. Применение энтеросорбентов при патологии органов пищеварения у мо лодняка свиней/В.В. Великанов, А.П. Курдеко, В.А. Лапина// Ученые записки Учреждения образования «Витебская ордена «Знак Почёта» государственная академия ветеринарной ме дицины, т.49, вып. 1, ч. I, 2013 г. С. 7-10.

3. Методические указания по токсикологической оценке новых препаратов для лечения и профилактики незаразных болезней, животных / Воронеж, 1987.- 22 С.

УДК 619:578.832. Ю.Б. Васильева, А.В. Мастиленко, А.Г. Семанин, А.С. Скорик, Е.И. Суркова Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А. Столыпина, grant-ugsha@yandex.ru ДЕТЕКЦИЯ БАКТЕРИЙ BORDETELLA BRONCHISEPTICA В МУЛЬТИПЛЕКСНОЙ ПОЛИМЕРАЗНО-ЦЕПНОЙ РЕАКЦИИ В настоящее время для диагностики бордетеллёза применяют бактериологический и серо логический методы. При этом длительность исследования занимает до 8 суток, что связано с АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ медленным ростом возбудителя, несвоевременным и неполным обследованием животных с затяжным кашлем, нарушением правил забора и транспортировки материала, несовершенной рецептурой питательных сред [1, 2, 3].

Молекулярно-генетические методы исследования генома позволяют осуществлять раннюю, более полную диагностику инфекционных заболеваний и своевременно проводить их диффе ренциацию. Однако в связи с отсутствием стандартизированных праймерных систем сущест вует проблема детекции бактерий B.bronchiseptica внутри рода. Поэтому актуально конст руирование полипраймерных тест-систем, с сочетаниями двух или более праймеров [2, 3].

Так как актуальным является вопрос о сокращении себестоимости и времени проведения ПЦР в «поточном» режиме» мы выявили необходимость разработки мультиплексной ПЦР— системы для скрининговых обследований животных на бордетеллёз.

Работа выполнялась на базе научно-исследовательского инновационного центра микробио логии и биотехнологии (НИИЦМиБ) ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина» и ООО «Медицинский Центр «Академия» (г. Ульяновск).

Молекулярно-генетические методы исследования включали в себя подбор уникальных праймерных систем, оптимального метода выделения нуклеиновых кислот (ДНК) из культур, универсального протокола ПЦР с детекцией в горизонтальном электрофорезе [2, 3].

На первом этапе работы мы подобрали праймеры, отвечающие требуемым условиям для проведения качественной реакции: длина праймеров 20—32 пары нуклеотидов, температура плавления праймера - 60—70С, размер фланкируемого праймерами участка гена - не менее 100 и не более 1000 п.о. Было решено использовать 2 системы праймеров к участкам генов bfrA и ccox и 3 системы праймеров к участкам генов bfrA, bfrZ и ccox (таблица 1).

Таблица 1 — Характеристика систем праймеров Участок гена B.bronchiseptica Параметры bfrA bfrZ ccox CCTTCCAGCACCTGG Прямой праймер (f) 5’- GGACGACCAGGATC CGGTACGAGTTGCTC GCATTGCTCCATCCTGTTGTGCG 3’ ACATCTTCC C Обратный праймер (r) CCCCGTGCCGGGGTG GCTTTCCTGGTAGTTG GATGGGTTATCTGAGCGCGC 5’-3’ CCTGGACCTGGGCG GCGTAGG Расчетная t плавления прямого и обратного 62,0С 62,0С 62,0С праймеров Теоретическая специ- B.bronchiseptica, B. pertussis, B.bronchiseptica B.bronchiseptica фичность B. parapertussis Длинна специфического 528 298 ампликона (п.о.) Экспериментально установили, что наилучший выход матричной ДНК обеспечивает сор бентная методика.

Провели оптимизацию режимов ПЦР. Исходя из расчетных температур плавления прайме ров, подобрали температуру отжига праймеров для создания универсального протокола ПЦР (62С). Это экономит ресурс работы амплификатора, сокращает время анализа и позволяет провести массовые исследования. Количество и соотношение праймеров были подобраны экспериментальным путем: по 5 pmol праймеров системы для участков генов bfrA и bfrZ и pmol для участка гена ccox.

Для обнаружения участка ДНК бактерий B.bronchiseptica были использованы суточные культуры, полученные путем культивирования при 37єС 24—48 ч на мясо-пептонном бульоне и селективно-диагностической среде. Пробы клинического материала — мазки и соскобы кле точного материала со слизистой зева — отбирались у кошек и собак с помощью стерильных шпателей и эндоцервикальных ПЦР щеточек. Отдельные колонии культуры, бактериологиче ская петля с бульонной культурой или мазки и соскобы клинического биоматериала непосред ственно от животных помещались в 0,5 мл стерильного физиологического раствора, предва рительно разлитого в условиях стерильности ламинарного ПЦР—бокса в микропробирки типа «Eppendorf» (объема 1,5-1,7 мл). Затем все пробы доставлялись в термоконтейнере в ПЦР— лабораторию.

После выделения ДНК на амплификаторе набирали программу, представленную в табли це 2.

После окончания реакции проводили анализ продуктов ПЦР методом горизонтального электрофоретического разделения фрагментов ДНК в агарозном геле.

В результате проведенных испытаний была доказана возможность использования разрабо танных праймерных систем при детекции B.bronchiseptica в мультиплексном формате ПЦР.

СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ Таблица 2 — Программа для амплификации ДНК Для амплификаторов с активным регулированием (по раствору в пробирке):

«Терцик» (НПО «ДНК—Технология», Россия) № цикла Шаг Температура Длительность Количество повторов 1 1 5 мин 95С 95С 1 10 сек 2 2 10 сек 62С 3 20 сек 72С 3 1 2 мин 72С Рисунок 1 - Электрофореграмма мультиплексной ПЦР:

1-15 — с использованием праймеров к участкам генов bfrA+bfrZ+ ccox;

16-30 — с использованием праймеров к участкам генов bfrA+ ccox;

1-13, 16-28 — полевые штаммы B.bronchiseptica;

14, 29 — отрицательные контроли;

15, 30 — маркер молекулярного веса Библиографический список 1. Методические указания «Отбор, проверка и хранение производственных штаммов кок люшных, паракоклюшных и бронхисептикозных бактерий». — М. — 2008.

2. Васильева Ю.Б. Конструирование биопрепаратов для лабораторной диагностики борде теллёзной инфекции // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной акаде мии. - 2013. - №2 (22). — С. 25.

3. Васильева Ю.Б. Сравнительная характеристика методов лабораторной диагностики бор детеллёза // Современные проблемы науки и образования. — 2013. — № 4. — С. 275.

УДК 619:578.832. Ю.Б. Васильева, А.В. Мастиленко, А.Г. Семанин, А.С. Скорик, Е.И. Суркова Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А. Столыпина, grant-ugsha@yandex.ru ПРОБЛЕМЫ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ БОРДЕТЕЛЛЁЗА ЖИВОТНЫХ И ПУТИ ИХ РЕШЕНИЯ В настоящее время основная роль в диагностике бордетеллёза принадлежит классическому микробиологическому методу. Диагностическая эффективность метода редко превышает АГРАРНАЯ НАУКА — СЕЛЬСКОМУ ХОЗЯЙСТВУ 40%, длительность анализа занимает до 8 суток. Это связано со слабой устойчивостью бор детелл во внешней среде, медленным ростом возбудителя, несвоевременным и неполным обследованием животных с затяжным кашлем, нарушением правил забора и транспортировки материала, несовершенной рецептурой питательных сред, в частности неудовлетворительным выбором селективных компонентов. При этом среды являются достаточно дорогостоящими.

Низкая эффективность иммунологической идентификации B.bronchiseptica обусловлена труд ностями внутриродовой дифференциации различных видов бордетелл по антигенным свойст вам. Следовательно, микробиологические методы недостаточно чувствительны, а серологи ческие — слабо специфичны [1, 2, 4].

Подавляющее большинство сравнительных экспериментов, проведенных зарубежными ис следователями, показывает превосходство молекулярно-генетических методов над классиче скими. Выявляемость бордетелл в клинических образцах с помощью ПЦР достигает 70%, специфичность анализа достигает 90%, а скорость его исполнения - 2,5 часа.

Методы фагодиагностики бордетеллёза не разработаны, хотя они позволяют быстро и точно выявить возбудителя при минимальных затратах на расходные материалы, оборудова ние и специалистов [1-3].

Сложность лабораторной диагностики бордетеллеза, его распространённость среди до машних и продуктивных животных с невыясненной этиологией кашля и бессимптомных носите лей, актуализируют поиск и разработку методических приемов, пригодных для детекции воз будителя Bordetella bronchiseptica [1, 2, 3].

Работа проводилась на базе научно-исследовательского инновационного центра микробио логии и биотехнологии (НИИЦМиБ) ФГБОУ ВПО «Ульяновская ГСХА им. П.А. Столыпина».

Объектами исследований послужили лабораторные и клинические штаммы B.bronchiseptica и индуцированные бордетеллофаги. Для получения гипериммунных сывороток к антигенам B.bronchiseptica было использовано 15 беспородных кроликов весом 2,5—3,0 кг.

В работе использовали общепринятые для выделения бордетелл методы, а также автор ские методики [4].

Для раннего и качественного выявления возбудителя бордетеллёза были разработаны и усовершенствованы бактериологический, иммунологический, молекулярно-генетический и фа говый методы.

В результате проведенной работы были получены следующие результаты. Бактериологиче ский метод включает взятие глубоких мазков из глотки животных на селективно диагностическую среду (состав среды г/л: пептон ферментативный 20,0;

метионин - 0,3;

и цистеин - 0,3;

никотиновая кислота - 0,1;

цефазолина натриевая соль - 0,004;

хлорид бария 0,4;

лактоза - 0,7;

сахароза - 0,7;

мальтоза - 0,7;

маннит - 0,7;

бромтимоловый синий - 0,02) и культивирование 24-48 ч, пересев и выращивание не менее 3-х характерных колоний бирю зового цвета в МПБ и в течение 24 ч при 37єС, микроскопию мазков, окрашенных по Граму и биохимические тесты на оксидазу, каталазу.

Иммунологический метод включает выделение антигенов ультразвуковой дезинтеграцией (частота 23 кГц, амплитуда колебаний 5 микрон, в течение 1 минуты на 1 мл суспензии бак териальной массы с постоянным охлаждением в смеси спирта со льдом), получение иммун ной сыворотки гипериммунизацией лабораторных животных (предварительное в/м введение адъюванта Фрейнда, в/в кроликам 0,25;

0,5;

0,75;

1,0;

1,25 и 1,5 мл антигена с интервалом 3 дня и забором крови через 20 дней с момента начала инъекций) и проведение иммунологи ческих реакций (РА, РИД, РДП).

Молекулярно-генетический метод включает: праймерные системы: Pr1- (5’ ccttccagcacctggcggtacgagttgctcc 3’), Pr1-2 (5’ ccccgtgccggggtgcctggacctgggcg 3’) для гена BfrA ДНК B. bronchiseptica;

Pr3-1 (5’ggacgaccaggatcacatcttcc 3’), Pr3-2 (5’ gctttcctggtagttgg cgtagg 3’) для гена BfrZ;

Pr4-1 (5’ gcattgctccatcctgttgtgcg 3’), Pr4-2 (5’ gatgggttatctgagcgcgc 3’) для гена Cytochrom—C—oxidase и Pr5-1 (5’ ctacgggggaaagcggggga 3’), Pr5- (5’ gaccgtactccccaggcggt 3’) для гена 16S rRNA;

сорбентный способ экстракции ДНК, темпе ратура отжига праймеров - 62°С, универсальная концентрация каждого из праймеров — 5 pmol на реакцию объемом 25 мкл;

проведение ПЦР в мультиплексном формате с одно временным выявлением 3 участков генов: bfrA, bfrZ и ccox, с соотношением праймерных систем — 1:1:3,5 соответственно или проведение ПЦР с регистрацией в режиме «реального времени» с интеркалирующим красителем SYBR Green I.

Фаговый метод включает: выделение бактериофагов B.bronchiseptica воздействием ульт рафиолетового излучения на бордетеллы: 1 день: t = 5-7 мин;

l = 1м. 2 день: t = 7-10 мин;

l = 1м. 3 день: t = 7-10 мин;

l = 0,5м), изучение и отбор по биологическим свойствам наибо лее активных фагов (спектр лизиса 92,5%;

литическая активность по Аппельману 10-7—10-8, по Грациа 3,1х108 — 4,3х109 активных корпускул в 1 мл) и изготовление препарата с технологиче скими параметрами: соотношение количества фаговых корпускул и бактериальных клеток ин СЕМИНАР — КРУГЛЫЙ СТОЛ 9. АКТУАЛЬНЫЕ ПРОБЛЕМЫ ВЕТЕРИНАРНОЙ МЕДИЦИНЫ дикаторных штаммов В.bronchiseptica - 1:2, время инкубации при температуре 37єС - 7 ч, обработка хлороформом в пропорции 1:10 в течение 15 мин, проведение фагоиндикации ме тодом «стекающей капли» - СПОТ-тест или фагодетекция в реакции нарастания титра фага.

Бактериологический, молекулярно-генетический, фагодиагностический методы эффективны для ранней диагностики бордетеллёза, иммунологический — для ретроспективной или как до полнение бактериологического метода. Бактериологический и молекулярно-генетический ме тоды являются дорогостоящими.

С диагностической целью индивидуально обследуются животные с клиническими признака ми бордетеллёза, а также длительно кашляющие животные. Для ранней индивидуальной диаг ностики возможно использование бактериологического, молекулярного или фагодиагностиче ского методов. По эпизоотическим показаниям массово обследуются животные питомников, приютов, гостиниц для временной передержки питомцев, а также молодняк до 1 года, нахо дившиеся в контакте с больными или подозрительными особями с помощью реакции нараста ния титра фага или ПЦР в мультиплексном формате.

Библиографический список 1. Васильева Ю.Б. Конструирование биопрепаратов для лабораторной диагностики борде теллёзной инфекции // Вестник Ульяновской государственной сельскохозяйственной акаде мии. - 2013. - №2(22). — С.25-29.

2. Васильева Ю.Б. Разработка методов фагодиагностики бордетеллёза // Вестник Улья новской государственной сельскохозяйственной академии. - 2013. - №2 (22). — С.51-56.

3. Васильева Ю.Б. Сравнительная характеристика методов лабораторной диагностики бор детеллёза // Современные проблемы науки и образования. — 2013. — № 4. — С.275.

4. Методические указания «Отбор, проверка и хранение производственных штаммов кок люшных, паракоклюшных и бронхисептикозных бактерий». — М. — 2008.

УДК 619: Ю.Б. Васильева, С.А. Соколов, А.А. Краснов Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия им. П.А. Столыпина, grant-ugsha@yandex.ru КОМПЛЕКСНЫЕ МЕТОДЫ ТЕРАПИИ СОБАК С ПАРВОВИРОЗОМ Статистические данные ветеринарных клиник Ульяновска показывают, что из инфекций со бак наиболее распространенными являются парвовироз, бордетеллез и чума плотоядных [1, 3].

Поиск эффективных схем лечения парвовирусного энтерита актуален, имеет практическое и теоретическое значение.



Pages:   || 2 | 3 | 4 | 5 |
 





 
© 2013 www.libed.ru - «Бесплатная библиотека научно-практических конференций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.