авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ БИБЛИОТЕКА РОССИИ

КОНФЕРЕНЦИИ, КНИГИ, ПОСОБИЯ, НАУЧНЫЕ ИЗДАНИЯ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ

Pages:     | 1 |   ...   | 8 | 9 || 11 | 12 |

«Министерство сельского хозяйства Российской Федерации Департамент ветеринарии Ульяновской области ФГОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия» ...»

-- [ Страница 10 ] --

в третьей группе опытных животных этот показатель превышал соответсвенно в 1,27 раз. Количество лейкоцитов у больных телят превышало показатели нормы в 2,5 раза. Характеризуя изменения в лейкоцитарной Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы Таблица 2. - Показатели неспецифической резистентности организма телят при исполь зовании подкислителей Муравьиная Биотроник СЕ Показатель Лактиплюс, М±m АсидЛак, M±m кислота, Контроль Форте, M±m M±m сутки 7-е 21-е 7-е 21-е 7-е 21-е 7-е 21-е 7-е 21-е Эритроциты, 7,5+0,2* 8,1+0,4* 6,2+0,3* 6,8+0,2* 7,3+0,1* 7,8+0,3* 7,3+0,2** 7,8+0,2** 5,9+0,2 6,1+0, млн/мкл Лейкоциты, тыс/ 6,2+0,5* 6,5+0,3* 4,3+0,5* 5,2+0,4* 8,12+0,48* 7,93+0,34* 7,05+0,3** 7,0+0,1** 16,17+0,65 17,1+1, мкл Эозинофилы,% 3,0+0,3* 2,5+0,1** 4,5+0,2* 4,1+0,3* 4,6+0,2** 4,5+0,10* 3,8+0,2** 3,4+0,1** 0,67+0,15 0,82+0, Базофилы% - - - - 2 - - - - Нейтрофилы:

0,2+0,1* 0,4+0,02* 0,2+0,1* 0,28+0,02* 0,3+0,1* 0,6+0,2* 0,2+0,1* 0,3+0,1** 0,41+0,2 0,71+0, Юные Палочкоядер 2,9+0,3* 2,6+0,2* 4,5+0,7* 4,01+0,5* 3,9+0,3* 3,2+0,1* 3,6+0,5** 3,9+0,1** 6,3+0,1 8,78+1, ные Сегментоядерные 35,2±0,5* 39,1±0,1* 32,4±0,7* 36,2±0,2* 37,2±0,2* 34,3±0,8* 31,7±0,8** 36,2±0,2* 30,1±0,6 28,3±0, Лимфоциты,% 45,5+2,5* 41,7+0,5* 47,9+2,5* 42,5+2,3* 45,2+2,3* 41,3+2,5* 46,6+2,1** 41,5+2,3* 57,17+5,8 55,4+5, Моноциты,% 8,3+0,5** 6,2+0,3** 6,2+0,2* 5,9+0,3* 7,0+0,2* 8,1+0,3* 7,2+0,2* 7,5+0,3* 2,6+1,2 2,3+0, Общий белок, 62,7+1,3* 65,3+0,7* 63,2+0,5** 61,2+0,3** 63,0+0,5** 61,1+0,2* 66,1+0,3* 67,2+0,1* 57,9+1,6 59,5+0, г/л Альбумины,г/л 34,7+0,7* 35,6+0,2* 30,1+0,3* 32,1+0,2* 37,5+0,3* 38,2+0,1** 39,8+0,5* 35,7+0,2* 27,1+0,3 29,2+0, Глобулины, г/л 37,2+0,3** 36,7+0,1* 32,1+0,5* 34,8+0,3* 37,9+0,1* 35,5+0,2** 32,1+0,3* 36,1+0,7* 30,3+0,8 31,2+0, Глюкоза, моль/л 3,2+0,2* 3,1+0,1* 2,8+0,5* 2,5+0,1* 3,32+0,2* 3,8+0,5* 3,8+0,3** 3,2+0,7** 2,9+0,24 2,9+0, Щелочная фосфатаза, 0,9+0,1* 0,1+0,5* 0,1+0,3* 0,4+0,2* 0,2+0,1* 0,8+0,2* 0,8+0,1* 0,3+0,2* 1,3+0,21 0,5+0, моль/ч. л римечание:*-Р0,05;

**-Р0, формуле телят, следует отметить, что в крови телят количество эозинофилов снижалось в I группе в 1,2 раза;

во второй –в 1,09 раза;

в III-в 1,02 раза;

в IV- в 1,18 раза, а у больных телят происходило уве -в личение в 1,22 раза. Количество моноцитов в опытных группах было достаточно высоким - в пределах 7%;

в группе больных телят количество моноцитов было в 2,5 раза меньше по сравнению с телятами, получавших подкислители. В начале опыта количество палочкоядерных нейтрофилов было выше к их количеству на 21-й день, кроме телят, получавших с кормом «Биотроник СЕ-форте» и телят контроль ной группы.

В отношении сегментоядерных нейтрофилов наблюдалось их возрастание к 21-му дню, кроме телят III группы и группы контроля.

Что касается биохимических показателей крови, то у телят опытных групп количество обще го белка находилось на уровне 61,2±0,3- 66,1±0,3г/л;

альбуминов-30,1±0,3-39,2±0,5г/л;

глобулинов 32,1±0,3-37,9±0,3, что в 1,1 ;

1,3;

1,18 раза больше соответствующих показателей у телят контрольной группы.

Таким образом, отмечалось усиление макрофагоцитарного потенциала, что хорошо просле живалось по достоверному увеличению количества палочкоядерных нейтрофилов и тендеции к повы шению сегментоядерных клеток.

Заключение. На основании проделанной работы показано, что сохранность телят в опытных группах оставалась на высоком уровне, прирост телят составил 30-215г. Наблюдалось стимулирующее действие подкислителей на лейкоцитарную активность, что выражалось и в изменении лейкоцитар ной реакции у телят опытной группы. Подкислитель «Лактиплюс в жировых микрокапсулах» вызывал повышение неспецифической резистентности организма в пределах физиологической реакции. Био химические показатели оставались в пределах физиологической нормы, что свидетельствует о биохи Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы мической эффективности. Не было существенных изменений в содержании общего белка, альбумина и глобулина. Телята хорошо переносили препарат, он не вызывал осложнений. Противопоказаний к его применению на телятах 10-30- дневного возраста нами не установлено.

Литература.

1. Абрамов С. С. Профилактика незаразных болезней молодняка./ Крестов И. Г., Карпуть И.

М. и др.-М. :Агропромиздат, 1990 г.

2. Самохин В. Т., Бузлама В. С.// Сб. науч. трудов «Проблемы повышения резистентности животных». - Воронеж, 1983 г.

3. Ширволн Ю. А., Акопов А. А., Алоян В. И. // Ветеринария, 1986, №12.

4. Митюшин В. В. Диспепсии новорожденных телят – М. Росагропромиздат, 1989 г.

5. Мозгов И. Е. Фармакологические стимуляторы в животноводстве. – М: Колос, 1964.

6. Карпуть И. М., Пивовар Л. М. //Сб. «Ветеринарная наука – производству.» - Минск: Урожай, 1984.

7. Вертипрахов В. Г. Применение панкреавитина для профилактики расстройств пищеваре ния у животных - //Ветеринария.- №2- 1999.- с. 44 – 45.

8. Апатенко В. М. //Ветеринария.- №5.-1997.

9. Ноздрин Г. А. //Тезисы докладов 7-ой межгосударственной научно-практической конферен ции «Новые фармакологические средства в ветеринарии» - СПб.- 1995 г.

10. Паршин П. А. Клинико – морфологические изменения при гастроэнтеритах у молодняка.// Ветеринария.- № 2.-2004.- с.42 – 45.





11. Мищенко В.А. Меры борьбы с диареями новорожденных телят / В.А. Мищенко, Н.А. Яре менко, Д.К. Павлов и др.// Ветеринария, 2002.-№4.-с.16-19.

12. Субботин В.В. Основы профилактики желудочно-кишечных заболеваний новорожденных животных./ Субботин В.В., Сидоров М.А.//Ветеринария.-1998.-№1.-с.3-7.

13. Люкштед К. Биотроник для борьбы с сальмонеллой // Кормление с/х животных и кормопро изводство. – 2006. – №4. – с. 36-38.

14. Ли В. Селацид – эффективная замена антибиотиков// Животноводство России-2002 декабрь- с.18-19.

15. Коробов А.П., Оркин В.Ф., Тарараева В.В., Кочнев Ю.А. Корректирование микробиоценоза кишечника цыплят препаратами-подкислителями, включаемыми в рацион// Вавиловские чтения-2007, г. Саратов, с. 330-331.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы УДК 579.083. ВОЗНИКНОВЕНИЕ НОВЫХ ШТАММОВ STREPTOCOCCUS INIAE ПРОИЗВОДЯЩИХ ЭКЗОПОЛИСАХАРИД ПОСЛЕ ВАКЦИНАЦИИ ШТАММАМИ БАКТЕРИЙ БЕЗ ЭКЗОПОЛИСАХАРИДА.

М.А. Эйнгор, доктор биологических наук, Лаборатория по болязням рыб, Ветеринарный институт им.

Кимрона, Israel.

Тел. 972 3 9681643, marinae@int.gov.i Авшалом Гурвиц, доктор биологических наук, Кибуц Дан, Верхняя Галилея, Israel.

Тел. 972 50 Ави Эльдар, доктор биологических наук, Лаборатория по болязням рыб, Ветеринарный институт им.

Кимрона, Israel.

Тел. 972 3 9681760, Ключевые слова: Стрептококкус иние (Streptococcus iniae), рыба, экзополисахарид (ЭС), вакцины.

Стрептококкус иние (Streptococcus iniae) является основной причиной смертности среди видов рыб, живущих в самых разнообразных условиях. В последнее время возобновление вспышек за болеваний были зарегистрированы у радужной форели (Orhhu ) в хозяйствах, где все поголовье рыбы обычно вакцинируется. Новые штаммы отличаются от предыдущих штаммов по их способности производить большое количество внеклеточного полисахарида, который выделя ется в питательную среду. олученные результаты показывают, что внеклеточный полисахарид является одним из основных антигенных факторов который определяет эволюционный отбор в пользу штаммов способных производить внеклеточный полисахарид.

Inuin.

Rly, u d ub w dd fi w fi ul w uly vd w dfid v w b dbd S. y II (ADH gv ). Dd fi wd j lgl g ll l g, d u l, ylly udgubl vuly w ld bld-g l v dd fi;

PCR ly vld ll u l S..

B ulu v- l vld, y vuly dbd w gv vu ulu.

Ms.

F. Sg EPS-du by S. w d by b ulu.

Il d ufi S. xllul d ul lyd.

C S. xllul d ul lyd b g g (GC).

V fi d y.

M Ig by y-ld ub y (ELISA).

sus.

GC fil d dvd EPS lyd ( l) d CPS (b l) vd gw du d ll b S. 477, vly.

EPS d CPS qulvly dl.

ld dud ll u EPS – 3,9-5,1 µg/l,.. -5 lg d l w.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы FIG. 1. GC fi f mnsi iv fm EPS si ( n) n CPS (bm n) vs fm gw mium n mmbns f S. ini 477, siv.

nin im sws sugs f sis f si n f nvsin in siv i s. sus m sns iv smi-quniin f vius mnsis nsuing si. Min sugs ini wi siv nin ims.

EPS nnin in s.

EPS dd fi 65 g/l, wl bgud ( fi bdg ly fi) w ly 5g/l (0.005).

EPS concentrations in serum 0, KFP 477 infected fish 0, mABS at 620 nm KFP 404 infected fish 0, Non-infected fish 0, 0, 0, 0, 1:1 1:2 1:4 1: S erum dilution FIG. 2. EPS nnin in s. Biin-ink insbn ss i ws f mii ws wi EPS uifi fm s bin fm fu iss n fu fis. Psis nnins w min ug Asn sfw (vsin 2,6). Bs sn sn viin f mn f fu s ximns. P0.005 (EPS bin fm s f KFP 404 inf fis n KFP 477 inf fis vsus fis).

Pin f vinin.

xl gu:

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы KFP- 404 – l-lld S. y II (EPS -du ) – 34% ;

KFP- 477 – l-lld ll (vl EPS du ) -78% ;

KFP- 404 – l-lld ll lu EPS – 82% ;

EPC - 72%.

FIG. 3. Pin f vinin. Fis (in gus f 30) w vin wi KFP fmin ki-s, KFP 477 fmin-ki s, KFP 477 fmin-ki s us uifi EPS n uifi KFP 477 EPS. Cngs w i u 8 wks s-vinin b inin infin wi 1.5 x106 CFU (5 LD50s) f viun S. ini KFP 477 sin. Miis w mni n i bsis, f 21 s. D sn s suviv vg fm fu ximns. Signifin vs mng gus, inuing n fis, swn in figu.

Dvmn f u nibis S. bl ll (l A), S. xllul lyd (l B) d b (l C).

A. ELISA with coated S. iniae bacterial B. ELISA with coated S. iniae EPS cells 1, 1, 1, 1, (mAba at 405nm) ( mAbs at 405nm ) Antibody bound Antibody bound 1, Non vaccinated 1, 1, 1,0 KFP 477 1, 0, 0, KFP 477 plus EPS 0,6 0, 0,4 EPS 0, 0,2 0, KFP 0,0 0, 1:100 1:200 1:400 1:800 1:1600 1:3200 1:100 1:200 1:400 1:800 1:1600 1: S erum dilution S erum dilution FIG. 3. Dvmn f u nibis S. ini KFP 477 bi s (n A), S.

ini xu si (n B) n b mnns (n C). T f xis sw i nsi in miibsbn vsus iuin f s (x xis). T nibis us f is ss w bin fm fis immuniz wi S. ini KFP 477 (), EPS bin fm S. ini KFP 477 uu (), S. ini KFP 477 s us EPS (), gus (vius vin) KFP 404 sin (), n nn vin fis ().

Cnusins.

P ld w lvl fi bd g w l, qufid b ELISA y;

xllul lyd w S iniae ly j vul, bu l g v uy.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы УДК 639:331- ПРОФИЛАКТИКА ИНВАЗИОННОГО ЖАБЕРНОГО ЗАБОЛЕВАНИЯ У МОЛОДИ КАРПА Г.Т. Бузмаков, кандидат сельскохозяйственных наук, доцент ФГОУ ВПО «Кемеровский ГСХИ»

тел. 8(384) 73-40- Ключевые слова: Молодь карпа, инвазия, известкование прудов.

Работа посвящена изучению причины заболевания молоди карпа под названием «неизвест ная жаберная болезнь» и разработке профилактических мероприятий по ее устранению.

В практике прудового рыбоводства встречаются явления, когда рыба скучивается в плотную стаю у поверхности воды, напоминающей пчелиный рой. Ихтиопатологи данное явление объясняют жаберным заболеванием карпа невыясненной этиологии или жаберный некроз. Болезнь чаще всего проявляется в начале июля, когда температура воды повышается до 22-240С. К осени она затухает. Ры боводы отмечают, что чаще всего болеют двухлетки карпа, так как сеголетки при позднем зарыблении выростных прудов имеют массу 0,1-0,2 г и их трудно увидеть в толще воды. При раннем зарыблении прудов, в начале июня, молодь карпа к началу июля достигает 3-5 г и ее можно легко увидеть в толще воды. Данное заболевание одно из самых опасных. Заболевшая молодь отказывается от корма, не рас тет. При отсутствии оздоровительных мероприятий данное заболевание способно вызвать массовую гибель выращиваемой рыбы. Возбудитель болезни не выявлен. Существуют гипотезы о вирусной и бактериальной природе заболевания [1].

С целью диагностики жаберного заболевания карпа, на выростных прудах Скарюпинского и Новокузнецкого рыбоводного хозяйства мы провели соответствующие исследования. Пруды Скарю пинского рыбхоза были зарыблены 2 июня личинками карпа, полученными от раннего нереста 19 мая.

Пруды Новокузнецкого рыбхоза были зарыблены 3 июня 2-х суточными личинками, полученными за водским способом.

При первом появлении признаков необычного поведения молоди рыб в начале июля, мы про вели исследования соскоба слизи с жабр на наличие эктопаразитов с помощью микроскопа. По данным исследований на жабрах были обнаружены моногенетический сосальщик дактилогироз (Dylgyu v), равноресничная инфузория апиосома (A l), круглоресничная инфузория (d dulu) и ихтиофтириус (Iyu ulfil). Также отмечалось большое количество сине-зеленых водорослей (Sg) и зеленых водорослей (Vlvx) [2]. ктопаразитов в поле зрения насчитывали в общем количестве до 10-16 экз. По оценке ихтиопатологов, данное количество эктопа разитов не является опасным для здоровья рыбы. Мы же считаем, что данное комплексное инвазион ное заболевание, вызываемое нарушениями гидрохимического режима, является опасным для молоди рыб. Находясь на первой стадии развития, эктопаразиты вызывают у рыбы зуд и беспокойство. При желании избавиться от сосальщиков, рыба сбивается в плотные стаи и трется друг об друга. Рыба от казывается от пищи, не растет. В дальнейшем, при увеличении количества паразитов становится мало активной, ослабевает и перестает сбиваться в плотные стаи. то вызывает у рыбоводов ложное пред ставление об отсутствии болезни. Заболевание может вызывать значительные отходы живой рыбы.

В целях устранения причины жаберного заболевания, рыбоводам было предложено произ вестковать пруды негашеной известь из расчета 20 кг/га. В Новокузнецком рыбхозе выростные пруды произвестковали в день исследования, в Скарюпинском рыбхозе – спустя 2 недели. ффективность проведения мелиоративных работ определяли методом темпа роста молоди карпа, а отход рыбы – по итогам вылова выращенной рыбы. Темп роста молоди карпа показан на рис. 1.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы Рис. 1. График роста молоди карпа на Скарюпинском и Новокузнецком рыбхозах Как видно из графика на Новокузнецком рыбхозе рост молоди карпа был равномерно повы шающим и к осени сеголетки карпа достигли стандартной массы 25 г. На Скарюпинском рыбхозе на протяжении почти 20 дней в июле молодь карпа практически не росла. Задержка в росте негативно ска залась на качестве выращиваемого рыбопосадочного материала. Сеголетки карпа имели нестандарт ную навеску, до 15 г. Такие же показатели получены и по выживаемости молоди рыб. Выход сеголетков карпа на Новокузнецком рыбхозе составил 55%, при нормативе 40%, на Скарюпинском рыбхозе – 35%, при нормативе 65%.

Таким образом, проведенные исследования показали, что причиной жаберного заболевания у молоди карпа является комплексная инвазия, вызываемая паразитическими простейшими и сине зелеными водорослями. Своевременное проведение мелиоративных работ, особенно известкование прудов в период резкого повышения температуры воды в конце июня – начале июля, предотвращает развитие паразитарных начал и благотворно сказывается на рыбоводных показателях.

Библиографический список:

1. Размашкин Д.А. Болезни рыб в прудовых хозяйствах Западной Сибири / Д.А. Размашкин,.Г. Скрипченко // Озерное и прудовое хозяйство в Сибири и на Урале : сб. науч. тр. -Тюмень, 1967.-С.

64-82.

2. Поляков А.Д. Паразитофауна рыбоводных водоемов Кузбасса и меры борьбы с ней / А.Д.

Поляков, Г.Т. Бузмаков // Медико-биологические проблемы: сб. науч. тр. - Кемерово - Москва, 2003. Вып. 12.- С. 53 - 55.

УДК 619:576.89;

619:616.995. ПРИМЕНЕНИЕ ПРЕПАРАТА КОЛЛАРГОЛА ПРИ ГЕЛЬМИНТОЗАХ СОБАК И.В. Заиченко, аспирант Тел. 9614962962, igorzaichenko@mail.ru В.А. Оробец, доктор ветеринарных наук, профессор Тел. 9283276016, orobets@yandex.ru ФГОУ ВПО «Ставропольский государственный аграрный университет»

Ключевые слова: гельминтозная инфекция, желудочно-кишечные заболевания, колларгол, серебро.

В работе рассмотрена гельминтозная этиология заболеваний ЖКТ у собак. Удалось уста новить, что при гельминтозной инвазии у собак отмечаются существенные отклонения от нормы Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы в биохимических показателях крови. Для восстановления нормальных физиологических показателей крови после дегельминтизации требуется применение симптоматического лечения в частности применение препарата колларгола.

Гельминтозы — хронические паразитарные болезни, при которых в процесс вовлекаются все органы и системы;

они вызываются паразитическими червями — гельминтами. то многоклеточные ор ганизмы, которые ведут паразитический образ жизни в теле другого организма. Механизмы патогенного действия гельминтов на организм животного чрезвычайно разнообразны:

1. Механическое воздействие.

2. Стимуляция аллергических реакций 3. Влияние на микрофлору.

4. Иммунодепрессивное действие.

5. Нарушение обменных процессов.

6. Токсическое влияние гельминтов.

7. Воздействие антиферментов гельминтов.

8. Нервно-рефлекторное влияние гельминтов Чаще всего паразитические черви оказывают механическое воздействие. В местах локализа ции половозрелые гельминты повреждают разные ткани органами фиксации (присосками, зубами, ку тикулярными шипами и др.). Прикрепляясь к слизистой оболочки кишечника, они нарушают ее целост ность, создавая тем самым входные «ворота» для бактериальной инфекции. В местах паразитирова ния гельминтов возникают воспалительные явления, особенно, ярко выраженные в начальной стадии заболевания, а также при нетипичной локализации паразитов.

Обычно у животных происходит расстройство деятельности пищеварительного тракта, раз вивается острое катаральное воспаление кишечника, которое переходит в хроническое. Нередко гель минты способствуют изменению биоценоза кишечника и увеличению доли патогенной и условно-пато генной микрофлоры, что приводит к дисбактериозу. Так же они снижают факторы защиты желудочно-ки шечного тракта, что приводит к развитию язвенной болезни желудка. Кишечные гельминты могут прово цировать острый гастрит, длительное воздействие которого, предрасполагает к развитию хронического гастрита. Рост и развитие собак при гельминтозах замедляются, отмечаются симптомы интоксикации, выделения неоформленных фекальных масс. В результате изменения осмоса, секреции, проницаемо сти, перистальтики может развиваться диарея. Хронический энтерит, характеризуется диареей в тече ние нескольких недель или месяцев [2]. Гельминты также могут вызывать хронический колит.

Гельминты питаются кровью хозяина, вызывая небольшие, но постоянные кровопотери и сни жая количество питательных веществ, потребляемых организмом хозяина. Продукты их жизнедеятель ности вызывают токсическое действие, но наиболее яркие признаки токсикоза проявляются при гибели и лизисе гельминтов, когда в кровь поступают продукты распада [4].

Гельминты и их личинки инокулируют микробов, фильтрующихся вирусов и патогенных про стейших в поврежденные ткани животных, в результате чего могут возникать или осложняться инфек ционные болезни.

Связь гельминтов и возбудителей инфекционных болезней К. И. Скрябин образно выразил словами: «Гельминтозная инвазия открывает ворота инфекции».

Постановка диагноза на гельминтоз, обычно сразу же предполагает назначение антгельмин тиков. На современном коммерческом ветеринарном рынке их достаточно много. Однако, для более быстрого выздоровления применение специфических средств недостаточно. Необходимо, так же ис пользовать симптоматическое лечение. При наличии заболеваний органов пищеварительной системы (гастрит, дуоденит, энтерит, дисбактериоз, диарея и др.) как инфекционного, так и неинфекционного происхождения к лечению мы рекомендуем добавлять препарат серебра колларгол.

Колларгол — коллоидный препарат серебра, обладает вяжущим, противовоспалительным противомикробным и антисептическим действием.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы Причем, спектр противомикробного действия колларгола значительно шире многих антибио тиков и сульфаниламидов. А бактерицидный эффект создается минимальными дозами препарата [3].

Так, В.С. Брызгунов с соавтором выявили, что серебро обладает более мощным антимикробным эф фектом, чем пенициллин, биомицин и другие антибиотики, и оказывает губительное действие на анти биотикоустойчивые штаммы бактерий [1].

Выявлено, что патогенная микрофлора намного более чувствительна к ионам серебра, чем непатогенная. Основываясь на этом факте, Ю.П.Мироненко, еще в 1971 году, разработал способ лече ния дисбактериоза различного происхождения ионным раствором серебра [6].

Механизм действия серебра на микробную клетку в свете современных данных заключается в том, что ионы серебра сорбируются клеточной оболочкой, которая выполняет защитную функцию.

Клетка остается жизнеспособной, но при этом нарушаются некоторые ее функции, например деление (бактериостатический эффект). Как только на поверхности микробной клетки сорбируется серебро, оно проникает внутрь клетки и ингибирует ферменты дыхательной цепи, а также разобщает процессы окис ления и окислительного фосфорилирования в микробных клетках, в результате чего клетка гибнет [4].

Результаты применения колларгола свидетельствуют об эффективности его действия при же лудочно-кишечных заболеваниях, холециститах, инфекционных гепатитах, холангитах, панкреатитах, дуоденитах, любых кишечных инфекциях без опасения погубить собственную полезную микрофлору и вызвать дисбактериоз. С успехом лечится язвенная болезнь желудка и двенадцатиперстной кишки, так как уничтожаются бактерии lbr plr и Cplbr plr, поддерживающие язвенный процесс.

При изучении действия препаратов серебра на организм отмечено его стимулирующее дей ствие на кроветворные органы, проявляющееся в исчезновении молодых форм нейтрофилов, увеличе нии количества лимфоцитов и моноцитов, эритроцитов и гемоглобина, замедлении СО.

В последние годы в литературе появились сведения о том, что серебро является мощным иммуномодулятором, сравнимым со стероидными гормонами. Установлено, что в зависимости от дозы, серебро может как стимулировать, так и подавлять фагоцитоз. Под влиянием серебра повышается количество иммуноглобулинов классов А, М, G, увеличивается процентное содержание абсолютного количества Т-лимфоцитов [7].

Цель нашей работы заключалась в оценке эффективности и влияния на организм собак при менения антгельминтиков в сочетании с колларголом при токсокарозе.

В своих исследованиях мы оценивали биохимические показатели крови, время их возращение к норме у собак страдающих спонтанным токсокарозом. У большинства больных собак биохимические показатели были увеличены АлАт до 19,01±0,72 ед/л, при АсАт в среднем 13,05±0,68;

ЩФ до 55+0, ед/л, амилаза до 38,04±1,38 мг/(с.л), общего билирубина до 3,09±0,49 мкмоль/л. Данные значения яв ляются доказательством функциональных изменений в организме хозяина и развитии гастроэнтераль ного синдрома с компонентом дисбактериоза.

В последующем больные животные были дегельминтизированы, а затем проведены исследо вания биохимических показателей крови. Нами установлено, что при назначении колларгола показате ли амилазы и щелочной фосфатазы приходили в норму в течение семи дней. Показатели АлАт, АсАт и общего билирубина возвращались к физиологическим значениям в течение 14 дней. В то время как восстановление изучаемых биохимических значений у собак при применении только антгельминтного затягивалось до полутора месяцев.

Таким образом, нами рассмотрена гельминтозная этиология заболеваний ЖКТ у собак. Уда лось установить, что при гельминтозной инвазии у собак отмечаются существенные отклонения от нормы в биохимических показателях крови. Для восстановления нормальных физиологических показа телей крови после дегельминтизации требуется применение симптоматического лечения в частности применение препарата колларгола.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы Библиографический список 1. Брызгунов В.С., Липин В.Н., Матросова В.Р. Сравнительная оценка бактерицидных свойств серебряной воды и антибиотиков на чистых культурах микробов и их ассоциациях//Научные труды Ка занского мед. института -1964.т.14.

2. Гармаш СИ., Гламаздин И. Г. Акценты патогенеза гельминтозов собак//материалы XVI Мо сковского международного конгресса по болезням мелких домашних животных, Московский Государ ственный университет прикладной биотехнологии (МГУПБ) 3. Зак В.И., ПопосВ.Н. Микроэлементы в медицине. – М.: Просвещение, 1973. - 280с.

4. Зрячкин Н.И. Гельминтозы (патогенез, клиника, диагностика, лечение, диспансеризация и профилактика)//учебно методическое пособие, издательство СГМУ 5. Ильин В.К., Поливода А.М., Полякова Т.С., Родимин Е.М., Соловьева З.О. Исследование антимикробных свойств линимента с оригинальной рецептурой, в состав которой входят соединения меди и серебра//научные чтения памяти К..Циолковского, г. Калуга 6. Шкиль Н.А., Бурмистров В.А., Юшков Ю.Г., Шкиль Н.Н., Соколов М.Ю., Сайченко В.И., Валюх В.Я., Родионов П.П. Применение серебросодержащего препарата агровит в ветеринарии// Институт кспериментальной Ветеринарии Сибири и Дальнего Востока, ЗАО «Вектор-Бест», г. Новосибирск УДК 619:616:99. ГЕЛЬМИНТОЗЫ ЛОСЕЙ В КОСТРОМСКОЙ ОБЛАСТИ С.Н. Королева, кандидат ветеринарных наук, доцент ФГОУ ВПО «Костромская государственная сельскохозяйственная академия»

тел. 8(4942)65-70-13, swetaser@kmtn.ru И.С. Окунев, старший научный сотрудник отдела лосеводства ГНУ Костромской НИИСХ Ключевые слова: гельминты лосей, лечение Зараженность лосей составляет в среднем 47 %. Наличие в организме лосей гельминтов отрицательно сказывается на физиологическом состоянии организма. Эффективность обработ ки ивермектином составила в среднем 95%, альбена - 71 %, альвета и панакура - 68%, панакура в удвоенных дозах — 82%.

Введение. Исследования проводились в условиях уникального природного заповедника – Су мароковской лосеферме. Лосеферма предоставляет ученым уникальную возможность наблюдать жи вотных в условиях, максимально приближенных к естественным.

Целью наших исследований явилась разработка научно-обоснованной системы борьбы с гельминтозами лосей в условиях Костромской лосефермы. Для чего мы считали необходимым изучить:

возможные микстинвазии лосей, паразитирующие в желудочно-кишечном тракте;

определить возраст ную и сезонную динамику и изучить эффективность применения различных антгельминтиков при гель минтозах желудочно-кишечного тракта лосей.

Гельминтозы как у диких, так и у домашних животных имеют широкое распространение. Мно гие виды возбудителей этих болезней обладают высокой вирулентностью и нередко вызывают тяжелые заболевания, заканчивающиеся летальным исходом [2;

5].

Гельминты оказывают отрицательное воздействие на организм животного. Характер и степень проявления этого действия зависит от вида и интенсивности инвазии, стадии развития паразитов и ин Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы дивидуальных особенностей организма животного [3].

Однако, адаптация, сложившаяся в течение длительной эволюции между лосями и некото рыми гельминтами, привела к тому, что заболевания протекают в бессимптомном или субклиническом виде. Но даже незначительная инвазия влияет на состояние популяции. Звери становятся более вос приимчивы к инфекционным заболеваниям, тяжелее переносят неблагоприятные климатические усло вия [4].

Видовой состав гельминтов диких животных имеет много общих элементов с паразитами до машних копытных [8]. Так, при гельминтологических исследованиях у лосей в Национальном парке «Лосиный остров» выявлено 17 гельминтов (2 вида трематод, 3 вида цестод, 12 видов нематод) [6].

В качестве антгельминтиков при желудочно-кишечных нематодозах жвачных животных эф фективны препараты в принятых дозах: фенбендазол (панакур), фенотиазин, альбендазолсодержащих препаратов [1;

7].

Материалы и методы исследований. Работа выполнена в ФГОУ ВПО Костромская ГСХА.

Исследования по теме проводятся с 2005 года на лосиной Сумароковской ферме Костромской области.

Для копрологических исследований ежемесячно собирали фекалии от животных разных воз растных групп и исследовали методами флотации (по Фюллеборну) и седиментации (последовательных промываний). Гельминтолярвоскопию проводили по методу Щербовича-Шильникова (культивирование в термостате) для выявления личинок стронгилят. А так же применяли макрогельминтоскопический метод последовательных промываний для обнаружения половозрелых паразитов после дегельминти зации. Всего исследовали 862 проб фекалий от лосей.

Для дегельминтизации лосей использовали дозы антигельминтных препаратов, рекомендо ванные для крупного рогатого скота: альбен в дозе 7,5 мг/кг (по ДВ), что соответствует 3,75 г гранул на 100 кг без предварительной голодной диеты, перорально, однократно, индивидуально;

альвет 37, мг/кг массы перорально, однократно, индивидуально;

ивермектин 1%-ный раствор вводят однократно, подкожно в область шеи или лопатки в дозе по ДВ 0,2 мг/кг из расчета 1 мл раствора на 50 кг массы тела;

препарат панакур гранулят в дозе 34 мг панакура на 1 кг массы животного (по ДВ 7,5 мг/кг) и 70 мг панакура на 1 кг массы животного.

ффективность лечения контролировали на 18-й день после дегельминтизации при помощи копроовоскопических и лярвоскопических методов.

Результаты исследований. Результаты работы указывают, что зараженность лосей в послед ние два года составляет в среднем 47 %, что на 42 % меньше, чем в 2005-2006 гг. (89 %). кстенсив ность инвазии у взрослых животных составила 45 %, а молодняка - 48 %.

Выявляется достаточно высокая зараженность животных трихоцефалами (lu v) и стронгилятами желудочно-кишечного тракта (нематодиры (Ndu.), кооперии (C ), остертагии (Og.), буностомы (Buu glu)) и мониезиями (M bd). Средняя зараженность взрослых лосей составила: трихоцефалами – 21%, стронгилятами желудочно-кишечного тракта – 23 %;

у молодняка: трихоцефалами – 31%, стронгилятами желудочно кишечного тракта – 34 %, мониезиями 11 %. Все это вызывает снижение упитанности, отставание мо лодняка лосей в росте и развитии.

При изучении сезонной динамики не отмечено значительных колебаний количества инвази рованных животных в определенный период года. Так, максимальная зараженность лосей в среднем достигла в зимний период и составила 45%, тогда как весной - 44,5 %, летом 36,5%, а осенью - 50,5 %.

Продолжительность отдельных стадий биологического цикла гельминтов зависит от природно-клима тических и метеорологических условий. На ограниченной территории лосефермы накапливается боль шое количество яиц и личинок гельминтов. Климатические условия Костромской области способствуют развитию интенсивности эпизоотического процесса при указанных нематодозах.

При проведении копрологически исследований было отмечено, что у молодняка в возрасте 1,5 месяцев (июнь) отмечалась сильная инвазированность простейшими рода E (до 65%). Все это вызывает снижение упитанности, отставание молодняка лосей в росте и развитии, снижение общей Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы резистентности животных, нарушение функций пораженных органов и систем.

Регулирование экстенсинвазии в среднем на уровне 47 % возможно благодаря периодическим обработкам животных противопаразитарными препаратами. С целью получения терапевтического эф фекта предложено использовать следующие антигельминтики: ивермектин, альбен, альвет и панакур в разных возрастных группах животных.

Испытание эффективности препаратов проводили на протяжении трех лет на лосях разных возрастных групп спонтанно зараженных стронгилятами и трихоцефалами. Животных с целью лечеб но-профилактической дегельминтизации обрабатывали препаратом ивермектин. ффективность со ставила в среднем против трихоцефал- 92%, против стронгилят - 97%. Через продолжительный период, когда экстенсивность инвазии достигла более 50%, провели обработку препаратом альбен. ффектив ность препарата составила в отношении трихоцефал - 63%, стронгилят - 78%. При вновь спонтанном заражении животных, когда экстенсивность инвазии при копрологических исследованиях достигла бо лее 55%, провели дегельминтизацию лосей препаратом панакур гранулят в дозе 34 мг панакура на кг массы животного. ффективность препарата составила в отношении трихоцефал - 63%, стронгилят 72%. Через 4 месяца провели обработку повторно препаратом панакур гранулят, но в два раза увели ченных дозах: 70 мг панакура на 1 кг массы животного. Завышенные дозы препарата хорошо перенесли животные, панакур не вызвал побочных явлений и осложнений. ффективность в отношении строн гилят желудочно-кишечного тракта составила 100%, в отношении трихоцефал - 63%. Для обработки также использовали препарат альвет. тот препарат в качестве действующего вещества содержит аль бендазол и витамин E. ффективность в отношении стронгилят составила 75%, трихоцефал - 60%.

Альбен, альвет и панакур оказались эффективными в отношении мониезий в 100%.

Осложнений у животных не отмечалось. Хорошие результаты показали препараты ивермектин и панакур в удвоенной дозе. Препараты менее эффективны в отношении трихоцефалеза лосей. Об работка животных позволила снизить до минимума зараженность животных.

Заключение. Формирование фауны гельминтов у лосей на лосеферме происходит под вли янием антропогенных факторов. то способствует накоплению и циркуляции паразитов между живот ными. Зараженность лосей составляет в среднем 47 %. Несомненно, что наличие в организме лосей перечисленных гельминтов отрицательно сказывается на физиологическом состоянии организма. В результате исследований эффективность ивермектина составила в среднем 95%, альбена - 71 %, аль вета и панакура - 68%, панакура в удвоенных дозах — 82%. Необходимо разрабатывать комплексную систему противопаразитарных мероприятий с учетом применения высокоэффективных препаратов.

Библиографический список:

1. Арисов М.В. Паразитозы крупного рогатого скота в Среднем, Нижнем Поволжье и новые химические средства в борьбе с ними //Автореф. дис. док.вет.наук. - Нижний Новгород.-2008.

2. Боев С.Н., Соколова И.Б, Панин В..Я. Гельминты копытных животных Казахстана. - Алма Ата: Академия наук Казахской ССР, 1962. – Т.1.- 375 с.

3.Киселева Е.Г., Цибизова Е.Л. Влияние зараженности гельминтами на развитие молодняка зубров//Материалы Международного совещания.-М.-2003.

4. Кочко Ю.П. Основные гельминтозы жвачных копытных Беловежской пущи.// Сохранение биологического разнообразия лесов Беловежской пущи. – Минск, 1996. – 354 с.

5. Кочко Ю.П., Якубовский М.В. Гельминты диких копытных Беловежской пущи.// Весц Аакар ных Навук РБ-Мнск, 2000, № 4.-с.70-79.

6. Самойлоская Н.А. колого-эпизоотологический анализ паразитарных болезней диких жвач ных в Национальном парке «Лосиный остров»//Автореф. дис. кан.биол.наук. - М.-2010.

7. Стариков Р.А. Желудочно-кишечные стронгилятозы овец и меры борьбы с ними в Ставро польском крае //Автореф. дис. кан.вет.наук. - Ставрополь.-2009.

8. Требоганова Н.В.Формирование гельминтофауны зубров Центральной России.// Материалы Межд. съезда, Териофауна России и сопредельных территорий, М., 2003.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы УДК 619:616:159:636. АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ АНАПЛАЗМОЗА КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА Е.Л. Либерман ГНУ ВНИИВЭА Россельхозакадемии тел. 8(3452)625705, eilat-tyumen@mail.ru М.А. Левченко, кандидат ветеринарных наук, ГНУ ВНИИВЭА Россельхозакадемии тел. 8(3452)625708, vniivea@mail.ru Х. Георгиу, доктор биологических наук, ГНУ ВИЭВ Россельхозакадемии тел. 8(045)7858427, chgeorgiou@rambler.ru Ключевые слова: анаплазмоз, крупный рогатый скот, паразитоносительство, эпизооти ческая ситуация, диагностика, лечение.

В статье обсуждаются проблемы, связанные с распространением, диагностикой и лечени ем анаплазмоза животных. риведены результаты ретроспективного анализа по выявлению ана плазмоза крупного рогатого скота в Тюменской области за последние 40 лет и собственные данные за 2010 год по югу области.

Ведущая роль в агропромышленном комплексе Тюменской области принадлежит животно водству мясо-молочного направления, а на севере области – развитию оленеводства. Для сохранения здоровья и благополучия населения основное внимание уделяется зооантропонозным болезням живот ных, ведутся регулярные обследования поголовья и ветеринарно-санитарный контроль в местах реа лизации животноводческой продукции. В тоже время, сельскохозяйственное производство стремится к увеличению продуктивности стада, наибольшей экономической эффективности затратных средств. В последние годы внимание ветеринарных специалистов обращено на кровепаразитарные заболевания, вызываемые простейшими организмами и риккетсиями. Протозоозы – это не только болезни – выра женные недомогания животных с более или менее ярким проявлением специфических клинических признаков, - но и состояния, которые могут протекать или абсолютно бессимптомно, или с субклиниче скими, совершенно неспецифическими, признаками токсикозов [1]. Одним из таких заболеваний явля ется анаплазмоз, наносящий значительный экономический ущерб.

Анаплазмоз – трансмиссивная природно-очаговая, кровопаразитарная, инвазионная болезнь сельскохозяйственных и диких парнокопытных животных, протекающая с явлениями глубокой анемии аутоиммунной природы, лихорадкой постоянного или перемежающего типа, расстройством работы сердца, органов дыхания и желудочно-кишечного тракта с последующим истощением и гибелью живот ного [2].

Случаи анаплазмоза регистрируются как в нашей стране [2, 3, 4, 5, 6, 7], так и за рубежом [8, 9, 10, 11]. кономический ущерб складывается не только от непосредственной гибели животных, но и от вынужденного убоя, снижения на длительный срок продуктивности, иммунного статуса, работоспо собности, от задержки в росте молодняка, а также затрат на проведение лечебно-профилактических и ветеринарно-санитарных ограничительных мероприятий [3, 6].

Заболевание часто протекает латентно, без видимых клинических признаков, и оказывает влияние на иммунный статус и обменные процессы. Происходит снижение функций кроветворения, сердечнососудистой системы и воспроизводства, уменьшение удоев [12, 13, 14].

Для планирования лечебно-профилактических мероприятий в регионе необходима полная картина по заболеваемости во всех хозяйствах. До сегодняшнего дня она по-прежнему ограничивается единичными исследованиями. По отчетным данным Управления ветеринарии Тюменской области за Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы последние 40 лет зафиксировано 575 случаев анаплазмоза крупного рогатого скота на территории юга Тюменской области, причем все они зарегистрированы за последние 22 года. По результатам наших ис следований только за 2010 год в 9 хозяйствах юга Тюменской области пораженность крупного рогатого скота анаплазмозом составила 44,3%. При этом выявлялась как хроническая форма заболевания, так и паразитоносительство. Причины низкой регистрации случаев анаплазмоза крупного рогатого скота связаны с отсутствием регулярного исследования крови крупного рогатого скота на инвазирование кро вепаразитами и с особенностями заболевания, которое в острой форме протекает быстро, с кратковре менным повышением температуры и клиническими симптомами, сходными с другими заболеваниями.

Паразитоносительство является одной из ключевых проблем в случае анаплазмоза, так как приводит к снижению иммунного статуса животного, анемии, что влечет за собой изменения в физио логическом состоянии, нанося ущерб здоровью как взрослому животному, так и молодняку. Являясь резервуаром, животные-паразитоносители способствуют циркуляции анаплазм в природе и передаче через переносчиков здоровым животным.

Проведение дифференциальной диагностики и выявление животных-паразитоносителей ос ложняется тем, что для районных ветеринарных лабораторий основным средством диагностики оста ется микроскопия мазков крови, а современные методы серологических исследований, более быстрые, достоверные и менее трудоемкие по сравнению с микроскопией, к сожалению, не всегда являются доступными.

Помимо диагностики существенные трудности связаны с лечением анаплазмоза. Небольшой ассортимент лекарственных препаратов и их токсическое действие на организм животного, а также долгие (до 28 дней) сроки выведения, не всегда позволяют добиться быстрого выздоровления и вос становления животного после заболевания [12]. Кроме того, существующие лекарственные средства не позволяют полностью освободить организм животного от паразита. Таким образом, актуальными направлениями исследований, связанных с анаплазмозом сельскохозяйственных животных, являются мониторинг эпизоотической ситуации, разработка средств диагностики и профилактики, создание эф фективных лекарственных препаратов.

Библиографический список:

1. Сахно В.М. Формы реакции организма хозяина на протозойную инвазию//Материалы Меж дународной научно-практической конференции, Москва, ВИВ, 26-27 ноября 2002 г.

2. Георгиу Х., Хамурзов Е.М., Горбунова Е.М., Орел В.Г. К вопросу о диагностике анаплазмо за крупного и мелкого рогатого скота / Х. Георгиу, Е.М. Хамурзов и др.// Ветеринарная патология, № 2, 2008, С.41-45.

3. Заблоцкий В.Т. Борьба и профилактика при кровепаразитарных болезнях сельскохозяй ственных животных // Ветеринария сельскохозяйственных животных, № 7, 2007, С. 8-13.

4. Казаков Н.А., Идина М.Ф. Анаплазмоз крупного рогатого скота в Тверской области // Вете ринарная патология №2, 2009, С. 72-75.

5. Камолов Н.Ш. Анаплазмоз крупного рогатого скота в Северном Таджикистане при моно инвазии и в ассоциации с бабезиозами, тейлериозом и меры борьбы с ними. Автореферат дис….канди дата биологических наук. Москва, 2008. 24 с.

6. Красиков А.П., Рудаков Н.В., Бейсембаев К.К., Кумпан Л.В. Основные биологические свой ства возбудителя анаплазмоза, выделенного из патологического материала от крупного рогатого скота / А.П. Красиков, Н.В. Рудаков и др.// Ветеринарная патология, № 3, 2007, С. 89-95.

7. пизоотическая ситуация в РФ (2009 год). ФГУ ВНИИЗЖ ИАЦ Управления Ветнадзора г.

Владимир. Составители С.А. Дудников, О.Н. Петрова, А.А. Шевцов и др. Информационно-аналитиче ский центр Россельхознадзора.

8. E S. ubld, v C. Mgu, Ad Guy H. Pl. D Al gl R P O Cll Sg by Ug Ag Cu Ey-Ld Iub Ay // Jul Cll Mblgy, July 1991, Vl. 29, N. 7, P. 1542-1544.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы 9. Gugll AA. Edlgy bb d l Su d Cl A // V Pl, 1995, M;

57(1-3). Р.109-119.

10. K M. K, J d l Fu, Alb A. Gugll, Ry D. Mld. Ag d Alv Cl Al gl I Cl // Cll Mblgy Rvw, Ob 2003, Vl. 16, N. 4, Р. 698-712.

11. S, M., E. P, d A. Hd. Idl d dl Al gl by Blu ulu l // A. J. V. R., 1993, N 54, P. 411-414.

12. Минасян В.Г., Ткаченко Ю.Г., Идина М.Ф. Методы лечения коров больных анаплазмозом // Ветеринарная патология, 2009, № 4, С. 82-85.

13. Сидорчук А.А. Анаплазмоз крупного рогатого скота и овец / Сидорчук А.А., Глушков А.А. // Ветеринария сельскохозяйственных животных, 2005, № 3, C.22-27.

14. Бейсембаев К.К. Клинико-морфологические изменения у животных спонтанно и экспери ментально инфицированных возбудителем анаплазмоза крупного рогатого скота // Вестник науки Казах ского государственного агротехнического университета им. С.Сейфуллина, 2009, №1, С.139-144.

УДК 598. КОКЦИДИОЗ (ЭЙМЕРИОЗ) ГОЛУБЕЙ Е.М. Романова, д.б.н, профессор;

Е.Г. Недвига, аспирант ФГОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия»

8(8422)55-95-38, nedvigaKat@mail.ru Ключевые слова: голубь, эймериоз, паразит, ооциста.

Эймериоз у голубей вызывается паразитированием в кишечном тракте кокцидий видов Eimeria columbarum (Nhulz, 1935) и r lbba (bb, 1896). Нами были проведены осмотр и копрологическое исследование 70 голубей из семи частных голубятен, располагающихся в Черда клинском районе Ульяновской области, имеющих клинические признаки кокцидиоза. Ооцисты Eimeria spp. были обнаружены нами в 56 исследуемых пробах фекалий. Экстенсивность инвазии составила 80 %.

Актуальность темы.

Кокцидиоз – это широко распространенное заболевание птиц, наносящее большой ущерб пти цеводству. Вспышки эймериоза обычно бывают весной, в начале лета, когда климатические условия становятся оптимальными для развития эймрий во внешней среде, а появившийся молодняк птицы наиболее восприимчив к заражению. Возбудителем кокцидиоза являются одноклеточные простейшие паразиты, как правило, овальной формы (рисунок 1) из рода Eimeria. У голубей чаще всего встречаются кокцидии вида Eimeria columbarum (Nul, 1935) и Eimeria labbeana (Lbb, 1896), живущие и пара зитирующие в кишечном тракте, поражая ткани, что приводит к нарушению процессов пищеварения и всасывания питательных веществ, обезвоживанию организма, потере крови и повышенной чувстви тельности к другим возбудителям болезни [1].

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы а) б) Рис. 1. Оцисты Eimi s.: а) под световым микроскопом (1040) б) схема Целью нашего исследования явилось выявление заболевания кокцидиозом голубей в частных голубятнях Чердаклинского района Ульяновской области.

Для достижения данной цели нами были решены следующие задачи:

1. Осмотр голубей и выявление птиц, имеющих клинические признаки заболевания.

2. Сбор фекалий от голубей с клиническими признаками кокцидиоза.

3. Копрологическое исследование фекалий на наличие ооцист кокцидий.

4. Статистическая обработка полученных результатов.

Повреждение тканей и функциональные изменения кишечного тракта могут привести к за селению организма различными видами патогенных бактерий. Поражение птицы кокцидиозом снижает общий иммунитет организма, а так же поствакцинальный, что приводит к усилению тяжести бактери альных и вирусных болезней. Подобно многим паразитарным болезням, кокцидиоз является в основ ном заболеванием молодняка. Уровень летальности составляет от 15 до 70% [2].

Выращивание птицы при большой скученности, повышенной влажности воздуха и подстилки, при неполноценном кормлении увеличивает возможность развития кокцидиоза. Источником инвазии являются, как правило, больной или переболевший молодняк, а также взрослые голуби, которые мо гут быть носителями эймерий. Инвазионное начало распространяется через загрязненные ооцистами эймерий корма, воду, кормушки, подстилку. Механическими переносчиками могут быть грызуны, насе комые, дикие птицы и т.д.

Распространенными признаками инвазии являются анорексия, зеленоватая диарея, заметное обезвоживание и истощение. Голуби начинают худеть, сидят, сгорбившись, и становятся вялыми. Помет водянисто-слизистый, может быть окрашен кровью, а весь пищеварительный тракт – воспален.

Материалы и методы исследования.

Нами были проведены осмотр и копрологическое исследование 70 голубей из семи частных голубятен, располагающихся в Чердаклинском районе Ульяновской области, имеющих клинические признаки кокцидиоза.

Фекалии собирали, отсаживая каждую птицу в отдельную коробку.

Копрологические исследования проводили методом Дарлинга (1911) [1].

Статистическую обработку полученных результатов проводили при помощи пакета программ M Ofi.

Результаты исследований.

Ооцисты Eimeria spp. были обнаружены нами в 56 исследуемых пробах фекалий. кстенсив ность инвазии составила 80 %.

Практические рекомендации.

Учитывая, что кокцидии присутствуют у голубей довольно часто, а перезаражение происходит через каловые массы, уборка голубятни и ее гигиенически безупречное состояние сводят вероятность появления инфекционных заболеваний к минимуму.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы С другой стороны, незначительное постоянное присутствие кокцидий вызывает формирова ние иммунитета, препятствующего распространению болезни. Так что бессистемное использование лекарственных средств не целесообразно.

Основным средством профилактики кокцидиоза является создание условий, исключающих возможность массового заражения восприимчивого поголовья, организация полноценного кормления, оптимальных условий содержания. Нельзя допускать в помещениях повышенной влажности воздуха, скопления помета, скученности птицы на ограниченных площадях. Необходимо исключить попадание помета в кормушки и поилки, систематически их чистить и дезинфицировать.

Для снижения негативного влияния зараженных ооцистами кокцидий экскрементов на сани тарное состояние голубятни, для создания неблагоприятных условий для развития и сохранения во внешней среде кокцидий и других паразитов (глисты, клещи) можно использовать минеральную гиги еническую подстилку. Минеральная подстилка посыпается в места попадания каловых масс (пол под насестами, вокруг гнезд). Удаляется по мере загрязнения.

В случае заболевания птицы лечение необходимо начать немедленно, чтобы не допустить раз вития инфекции. При своевременном лечении голуби быстро выздоравливают, поврежденные участки кишечника восстанавливаются. Для лечения существует целая группа лекарственных препаратов под общим названием кокцидиостатики. Список этих препаратов постоянно меняется в связи с выработкой устойчивости к ним кокцидий.

В настоящее время возможно использование с хорошим эффектом таких препаратов как ам пробел, ампролиум, байкокс, ветакокс. Учитывая, что ооцисты обладают высокой устойчивостью к дей ствию всех дезинфицирующих средств и низких температур, но погибают при высушивании и чувстви тельны к действию высокой температуры [3], наиболее надежным средством для борьбы с кокцидиями во внешней среде является фламбирование огнем паяльной лампы или газовой горелки.

Библиографический список:

1. Практикум по диагностике инвазионных болезней сельскохозяйственных животных / М.Ш.

Акбаев и др.;

Под ред. М.Ш. Акбаева. – М.: КолосС, 2006. – 536.

2. Рахманов А.И., Бессарабов Б.Ф. Голуби и профилактика их заболеваний. – М.: Россельхо зиздат, 1987. – 273 с.

3. Свинцов П.М., Ушакова А.А., Скрябина К.И. Болезни птиц. – М.: Государственное издатель ство сельскохозяйственной литературы, 1951. – 440 с.

УДК 631.472.56.

ОЦЕНКА СТРУКТУРИРУЮЩИХ СПОСОБНОСТЕЙ ЛЮМБРИЦИД СРЕДНЕВОЛЖСКОГО РЕГИОНА Е.М. Романова, д.б.н, профессор;

М.Э. Мухитова, к.б.н., ассистент;

Игнаткин Д.С., к.б.н., старший пре подаватель тел: 8 (8422) 55-95- ФГОУ ВПО «Ульяновская государственная сельскохозяйственная академия»

Ключевые слова: Вермикомпост, люмбрициды, утилизация отходов, структурный анализ.

Вермикомпост - микрогранулярное удобрение, который содержит в сбалансированной фор ме все необходимые для питания растений вещества. Вермикомпост – продукт, полученный в ре зультате трансформации отходов животноводства люмбрицидами. Одна из основных характери стик червей – способность структурировать субстраты. Мы оценили содержание ценной фракции Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы в вермикомпостах. Наиболее высокие показатели структурированности были свойственны верми компостам. rrr из субстрата на основе навоза крупного рогатого скота Проблема отходов ферм состоит в том, что навоз как органическое удобрение, расходуется только периодически и поэтому, накапливаясь у ферм, занимает большие площади, загрязняет атмос феру, в разбавленном виде, просачивается из хранилищ в почву, попадает в водоемы, что наносит вред окружающей среде. Навоз является также источником возбудителей инфекционных и паразитарных болезней.

Рассматривая проблему утилизации животноводческих отходов, среди которых имеются раз нообразные растительные остатки, необходимо иметь в виду не только превращение их в органические удобрения, но и возможности биотрансформации в источник пищи, кормов и энергии (Черников В.А., 2004).

Люмбрициды — главные воспроизводители плодородия почвы. Люмбрициды — крупные по чвенные беспозвоночные животные самые древние и многочисленные на Земле. Только на территории России их насчитывается около 100 видов. то их деятельностью создавались и создаются почвы.

И весьма перспективным направлением является биологическое земледелие. Вермикомпостирование (v – черви) отходов люмбрицидами - безотходная технология, дающая возможность получать новое экологически чистое удобрение — биогумус (вермикомпост) и биологическую массу вермикультуры.

Вермикомпост представляет собой комковатое микрогранулярное вещество коричнево-серо вого цвета с запахом земли. Он содержит в хорошо сбалансированной и легкоусвояемой форме все необходимые для питания растений вещества.

Цель работы: Исследование структурного состава вермикомпостов (биогумуса) люмбрицид.

Задачи: 1. Провести гранулометрический анализ вермикомпостов E. fetida и. terrestris.

2. Провести анализ состава произведенных продуктов.

Материалы и методы: В качестве объектов для исследования были скомпанованы субстраты, состоящие из навоза сельскохозяйственных животных (70%): крупного рогатого скота, свиного, овечьего и кроличьего, измельченной соломы (20%) и почвы (5-10%).

Каждый из субстратов подвергался биоконверсии представителями семейства Lubd:

почвенными червями вида. terrestris и компостными червями E. fetida.

Провели определение видовой принадлежности червей (Перель Т.С., 1979;

Всеволодова-Пе рель Т.С., 1997).

После вермикомпостирования в биогумусе по методике определяли структурный состав. Пу тем просеивания биогумуса в воздушно-сухом состоянии фракционировали агрегаты разных размеров.

Структурный состав вермикомпостов определяли сухим просеиванием по ГОСТу 12536-79.

Структурный состав биогумуса является важным показателем в оценке его качества. Наибо лее ценной для растений является фракция биогумуса, содержащая копролиты люмбрицид размерами 2,5/2,0-1 мм.

Полученные нами вермикомпосты хорошо структурированы и представлены агрегатами раз мером от 0,25 до 5 мм.

Результаты и обсуждение: Мы оценивали структурный состав вермикомпостов, выработанных природными компостными люмбрицидами E. fd.

В продукте из субстрата на основе кроличьего навоза, продуцированном навозными червями на долю вермикомпоста приходилось 88,33%, солома - 1,34%, кора - 10,33%.

В общей массе вермикомпоста преобладала фракция с размерами копролитов 2,5/2,0 -1 мм 59,25±1,5%;

доля фракции 0,25 мм была минимальной - 1,60±0,1%;

фракция 10мм - 3,43±0,7%;

фрак ция 1-0,25 мм - 5,75±0,8%;

фракция 10-7 мм - 6,23±1,2%;

фракция 5-2,5/2,0 мм - 10,69±1,5%;

фракция 7-5 мм - 13,05±0,9% (рис. 1.).

В продукте из субстрата на основе отходов овцеводства, продуцированном компостными чер вями на долю вермикомпоста приходилось 94,74 %, кора - 5,26 %.

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы Вермикомпост из овечьего субстрата, продуцированный E. fd характеризовался сле дующим структурным составом. Наибольшая фракция 2,5/2,0-1 мм - 41,54±1,5%, самая малая мм - 2,01±0,6%, фракция 0,25мм - 4,43±0,9%;

фракция 5-2,5/2,0 мм - 7,02±0,7%, фракция 10-7 мм 11,12±1,2%, фракция 7-5 мм - 15,19±0,8%, фракция 1,025 мм - 18,69±1,4% (рис. 1.).

В вермикомпосте из свиного субстрата, выработанном навозными червями доля вермикомпо ста составляла 93,88%, соломы - 1,52% и коры - 4,6%.

Наибольший процент в общей массе вермикомпоста составляла фракция с размерами ко пролитов 2,5/2,0-1 мм - 40,16±0,9%. Доля фракции 0,25мм была наименьшей и составила 3,29±0,4%.

Доля фракции с размерами копролитов 10 мм составила 6,19±0,5%, фракции 1-0,25мм - 9,67±0,8%, фракции 5-2,0/2,0 мм - 11,12±1,3 %, фракция 10-7мм - 13,11±1,5% и фракции 7-5 мм - 16,46±1,7 %. (рис.

1.).

В продукте из субстрата на основе отходов скотоводства, переработанном компостными чер вями (E. fd), доля вермикомпоста составила 99,4%, соломы 0,52% и коры - 0,44%.

Наибольшая фракция с размерами копролитов 2,5/2,0-1 мм, его доля в общей массе верми компоста составила 43,21±1,3%. Наименьшее содержание фракции 10 мм - 1,93±0,1%. Содержание фракции 0,25мм составляла 3,34±0,5%, фракции 10-7мм - 6,44±0,7%, фракции 1-0,25мм - 7,34±0,9%, фракции 7-5 мм - 16,64±0,9% и фракции 5-2,0/2,0 мм - 21,16±1,5%. (рис. 1.).

Вермикомпост из Объем каждой фракции, субстрата крупного рогатого скота Вермикомпост из % свиного субстрата Вермикомпост из 10 овечьего субстрата 10мм 10-7мм 7-5мм 5- 2,5/2,0- 1-0,25мм 0,25мм Вермикомпост из 2,5/мм 1мм кроличьего субстрата Фракции вермикомпоста, мм Рис. 1. Структурный состав вермикомпостов E. fi На следующем этапе мы оценивали структурный состав вермикомпостов почвенных червей. rrr.

В продукте из субстрата на основе кроличьего навоза доля вермикомпоста составила 84,12%;

соломы - 0,88% и коры - 15%.

Не выявлено ни одной фракции, доля которой составила бы более 50% в общей массе вер микомпоста. Наибольшая фракция 10 мм - 32,10±1,6%;

фракция 2,5/2,0-1 мм - 25,73±1,3%;

фракция 10-7 мм -19,40±1,5%;

фракция 7-5 мм - 11,11±0,8%;

фракция 5-2,5/2,0 мм - 6,18±0,7%;

фракция 1-0, мм - 3,74±0,6%;

самая малая фракция 0,25мм - 1,68±0,9% (рис. 2.).

В вермикомпосте из исходного субстрата на основе овечьего навоза доля вермикомпоста со ставила 92,84%, кора - 6,99%, солома - 0,17% Наибольшая фракция копролитов 2,5/2,0-1 мм - 52,19±1,5%, наименьшая фракция мм - 1,48±0,3%, фракция 10-7мм - 4,94±0,7%, фракция 0,25мм - 7,10±0,5%, фракция 5-2,0/2,0 мм 9,98±0,4%, фракция 7-5 мм - 10,55±1,1%, фракция 1-0,25мм -13,70±1,3% (рис. 2.).

В продуктах из исходного субстрата на основе навоза крупного рогатого скота доля вермиком поста составила 79,84%, соломы 15,84% и коры 4,32%.

Наибольшая фракция 2,5/2,0-1мм - 62,15±1,2%, наименьшие фракции 0,25мм -2,21±0,1%, Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы фракция 10 мм - 2,35±0,6% и фракция 1-0,25мм - 2,49±0,4 %, фракция 10-7мм - 4,08±0,7%, фракция 7-5 мм - 6,39±0,8%, фракция 5-2,0/2,0 мм - 8,14±1,2% (рис. 2.).

В продукте из субстрате на основе свиного навоза доля чистого вермикомпоста составила 99,29%, солома - 0,28% и коры - 0,43%.

По отношению к общему объему содержание каждой фракции ниже 50%. Фракция 2,5/2,0-1 мм - 25,94±1,2%, фракция 10-7мм - 22,98±1,3%, фракция 5-2,0/2,0 мм - 21,72±0,9%, самая малая фракция 0,25мм - 1,77±0,3%, фракция 1-0,25мм - 2,75±0,7%, фракция 10 мм - 11,08±0,9%, фракция 7-5 мм 13,76±1,4% (рис. 2.).

Вермикомпост из субстрата на основе свиного навоза Объем фракций,% Вермикомпост из субстрата на основе крупного рогатого скота 30 Вемикомпост из овечьего субстрата 10 Вермикомпост из кроличьего субстрата 10мм 10-7мм 7-5мм 5- 2,5/2,0- 1- 0,25мм 2,5/мм 1мм 0,25мм Фракции вермикомпоста, мм Рис. 2. Структурный состав вермикомпостов L. sis Выводы:

1. Наиболее высокие показатели были свойственны вермикомпостам. rrr из субстра та на основе навоза крупного рогатого скота. Содержание наиболее ценной для растений фракции (2,5/2,0-1 мм) составило в них 62,15±1,2%. В вермикомпосте. fd из субстрата на основе кроличьего навоза доля наиболее ценной фракции составила - 59,25±1,5%.

2. В вермикомпосте. rrr из овечьего субстрата содержание ценной для растений фракции составило 52,19±1,5%. В вермикомпостах. rrr из кроличьего субстрата и из свиного субстрата доля наиболее ценной для растений фракции была низкой и не превышала 25,73±1,3% и 29,94±1,2% соответственно. Столь широкий размах в показателях структурированности свидетельству ет в пользу избирательности действия вермикультуры. rrr на отдельные субстраты.

3. Во всех вермикомпостах. fd, за исключением кроличьего, содержание ценной фрак ции в среднем составляло 40-43%. В вермикомпостах из субстрата крупного рогатого скота доля наи более ценной для растений фракции составляла – 43,21±1,3%, из овечьего субстрата – 41,54±1,5%, из свиного субстрата – 40,16±0,9%.

4. Вид люмбрицид. rrr обладал наилучшими структурирующими качествами по отно шению к овечьему субстрату и субстрату крупного рогатого скота, вермикультура. fd - по отноше нию к кроличьему, вермикультура.f. dr - по отношению к навозу крупного рогатого скота Литература:

1. Черников В.А., Алексахин Р.М., Голубев А.В. Агроэкология / М.: Колос, 2004. – 536 с.

2. Перель Т.С. Распространение и закономерности распределения дождевых червей фауны СССР (с определительными таблицами Lubd) М.: наука, 1979. – 271 с.

3. ГОСТ 12536-79. «Грунты. Методы лабораторного определения гранулометрического (зерно вого) и микроагрегатного состава».

Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы УДК 619:616-07:595.773. ДИАГНОСТИКА ПАРАЗИТАРНЫХ ЗАБОЛЕВАНИЙ НА РАННИХ СТАДИЯХ Е.А. Степанова, кандидат ветеринарных наук И.А. Трус, кандидат ветеринарных наук М.В. Якубовский, доктор ветеринарных наук, профессор РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского», Беларусь тел. 8 (017) 508-83-53, bievm.parasitology@tut.by Ключевые слова: гиподерматоз, подкожный овод, антиген, иммуноферментный анализ, эпизоотология, иммунитет.

В статье приведены данные по разработке способа получения антигена для диагностики гиподерматоза крупного рогатого скота и способа диагностики, позволяющей выявлять заболевание на начальных этапах развития гиподерматоза.

Введение. Ощутимый экономический ущерб хозяйствам нашей республики наносят парази тарные заболевания, и не последнее место в этом ряду занимает гиподерматоз крупного рогатого скота [1, 2, 3, 4]. Гиподерматоз является повсеместно распространенной инвазией. В Республики Беларусь при сравнении динамики инвазирования крупного рогатого скота личинками подкожного овода в 2003 2010 гг. по данным обследования на мясокомбинатах, в населенных пунктах и хозяйствах следует отме тить, что в различные годы средняя инвазированность животных личинками H. bv колебалась незна чительно и составила 1,54±0,27%, с максимальным заражением в мае-июле – 3,96±1,06-5,36±1,22%.

У не обработанных животных зараженность личинками подкожного овода в 3-10 раз выше. Однако объемы обработок животных остаются достаточно высокими, так как приходится обрабатывать всех животных неблагополучных стад, в противном случае может произойти массовое заражение животных подкожным оводом.

Потери продуктивности при гиподерматозе составляют: привесов – до 15%, молока – до 20%, качество шкур снижается в среднем на 10%, а нередко на 50% и более (М.В. Якубовский и соавт., 1998, 2000, 2001). Следует учитывать также и то, что гиподерматоз крупного рогатого скота является зоонозом.

Болезнь протекает хронически и характеризуется воспалительными явлениями в местах оби тания личинок оводов, общей интоксикацией организма и снижением молочной и мясной продуктив ности животных.

Особенностью протекания гиподерматоза является то, что на первых этапах заражения труд но диагностировать болезнь, так как личинки подкожного овода находятся в организме животного в течение 7-9 месяцев (после откладывания оводом яиц на шерсть животного) и они могут быть выявле ны визуальным осмотром только в последние 1-2 месяца своего цикла развития. На протяжении всего этого продолжительного периода, когда животные уже инвазированны личинками подкожного овода, но им еще не поставлен диагноз (в связи с отсутствием клинических признаков). В связи с тем, что не возможно выявить больных животных на ранних стадиях заболевания, приходится применять лечебно профилактические обработки ко всем животным, что увеличивает себестоимость сельскохозяйствен ной продукции.

Более перспективными считаются работы, направленные на создание метода выявления жи вотных на начальных стадиях развития личинок подкожного овода с применением различных методов лабораторных исследований.

Сотрудниками отдела паразитологии РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского» в 2000-2005 гг. был разработан аллерген из личинок подкожного овода для ранней аллергической диагностики гиподерматоза крупного рогатого скота, который обладает эффек Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы тивностью 95-98%. Утверждена нормативная документация на «Аллерген из личинок подкожного овода для ранней диагностики гиподерматоза крупного рогатого скота» (ТУ BY 600049853.086-2006). Однако для изготовления данного аллергена необходимо большое количество личинок подкожного овода, что усложняет и ограничивает его производство.

В 2006-2010 гг. нами были проведены работы по разработке очищенного антигена для ранней иммунодиагностики гиподерматоза (ИФА) с эффективностью не ниже 98,5%.

Материалы и методы исследований. Для решения проблемы ранней диагностики гиподер матоза на основе биомассы H. bv нами был получены антигены из личинок подкожного овода. В основу антигенов был положен ультразвуковой дезинтеграт личинок с минимальным содержанием тка невых антигенов крупного рогатого скота. Приготовленные соматические антигены испытали в реакции иммуноферментного анализа.

Результаты исследований и их обсуждение.

Нами были получен ряд антигенов двух видов (соматический и экскреторный) из личинок Hy d bv. Исходный материал собрали при убое больных гиподерматозом животных на мясоком.

бинате.

На первом этапе провели испытание приготовленных серий антигенов с сыворотками крови и молоком животных при клиническом проявлении гиподерматоза крупного рогатого скота.

Результаты исследований:

Таблица 1 – Испытание приготовленных 5 серий антигенов с сыворотками крови и мо локом животных при клиническом проявлении гиподерматоза крупного рогатого скота Среднее превышение оптической Стандартное отклонение средне Используемая серия антигена плотности положительной пробы го превышения оптической плот над отрицательной ности сыворотки крови молока сыворотки крови молока кскреторный антиген 1,08 0,97 0,41 0, 1 серия соматического антиген 1,52 1,57 0,11 0, 2 серия соматического антиген 1,23 1,11 0,29 0, 3 серия соматического антиген 1,12 0,90 0,37 0, 4 серия соматического антиген 1,41 1,20 0,42 0, Таким образом, 2 серия соматического антигена показала наиболее приемлемые результаты для дальнейшей его использования (наибольшее значение среднего превышения оптической плот ности положительной пробы над отрицательной) с последующей оптимизацией параметров способа диагностики для увеличения его диагностической значимости.

На следующем этапе была проведена работа по оптимизации параметров способа диагности ки для увеличения его диагностической эффективности.

Были проведены испытания использования различных составов буферных растворов. Наи более высокие показатели среднего превышения оптической плотности положительной пробы над от рицательной (в 2 раза и более) были получены при сочетании следующих буферов: 0,15 М КББ (рН 9,8);

0,1 М ФСБТ (фосфатный буфер на бидистиллированной воде с 0,05% твин-20, H 7,4).

Провели испытания различного времени закрепления белка на планшете. Установлено, что при инкубировании планшета с антигеном в течение 5-7 часов результаты исследований резко сни жались (превышение оптической плотности положительной пробы над отрицательной было в 1,2-1, раза), тогда как при более длительной инкубации 14-24 часа наблюдались схожие результаты (превы шение оптической плотности положительной над отрицательной сывороткой было в 2 раза и более).

Наиболее приемлемые результаты были достигнуты при инкубировании планшета с антиге ном в течение 8-12 часов (превышение оптической плотности положительной над отрицательной сы вороткой было в 2 раза и более).

Таким образом, были подобраны этапы и компоненты для приготовления антигена из личинок Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы подкожного овода, предназначенного для выявления животных, инвазированных личинками Hyd bv на ранних стадиях развития заболевания по исследованию в сыворотки крови или молока обсле дуемых животных.

На втором этапе изучили динамику выявления антител к личинкам H. bv на различных ста диях заболевания гиподерматозом крупного рогатого скота. В РУСПП ППР «Правда» Минского района подобрали 2 группы животных (2-3 летнего возраста): 14 голов инвазированных личинками подкожного овода и 12 голов – неинвазированных личинками подкожного овода животных. Формирование животных в группы провели на основании результатов аллергической диагностики с использованием аллергена из личинок подкожного овода для ранней диагностики гиподерматоза крупного рогатого скота.

Первое исследования крови животных в обеих группах провели в феврале с целью изучения динамики выявления животных в ИФА при субклинической форме гиподерматоза;

второе в мае с целью изучения динамики выявления антител к личинкам H. bv в ИФА при клинической форме гиподерма тоза (наличие желваков);

третье в июле с целью изучения динамики выявления антител к личинкам H. bv в ИФА при постклинической форме гиподерматоза;

четвертое и пятое с целью изучения ди намики выявления антител к личинкам H. bv в ИФА после переболевания гиподерматозом крупного рогатого скота в сентябре и октябре.

Антиген (1,2-1,3 мг/мл) разводили 1:100, сыворотки крови разводили 1:25, 1:50, 1:100. В опыте использовали 5 сывороток крови здоровых коров, 6 сывороток молодняка крупного рогатого скота ги периммунизированного гиподерматозным антигеном и 26 сывороток крови коров, спонтанно инвазиро ванных личинками подкожного овода. Наиболее достоверные данные были получены при разведении исследуемых сывороток 1:25.

При обобщении полученных данных установили, что диагностически значимый уровень вы явления в ИФА сывороточных антител к личинкам подкожного овода появляется не ранее 30-42 дней после заражения, достигает своего максимума к 259-280 дню (февраль-май) и снижается ниже диагно стически значимого уровня на 45-67 день после выпадения личинок, что позволяет начинать раннюю диагностику гиподерматоза (ИФА) с 5-10 октября без риска ошибочного выявления переболевших жи вотных.

На следующем этапе изучили диагностическую эффективность иммуноферментного анализа для выявления спонтанно инвазированного личинками подкожного овода крупного рогатого скота. Для чего подбирали группы животных спонтанно инвазированных личинками подкожного овода. Формиро вание животных в группы проводили на основании результатов аллергической диагностики гиподер матоза с использованием аллергена из личинок подкожного овода (ТУ 600049853.086-2006). У живот ных опытных групп проводили отбор проб сывороток крови, которые проверяли на наличие антител с помощью набора. Для подтверждения результатов иммуноферментного анализа и установления его диагностической эффективности (чувствительность и специфичность) в апреле-августе проводили об следование животных на наличие клинических признаков заболевания гиподерматозом и сравнили их с данными, полученными при постановке иммуноферментного анализа В первом опыте в РУСПП ППР «Правда» и СПК «Щомыслица» Минского района подобрали 2 группы животных в количестве 24 и 52 голов предварительно не обработанных с профилактической целью противооводовыми препаратами. В опыте использовали 76 сывороток крови от опытных групп животных, в качестве контроля использовали 5 сывороток крови здоровых коров, 3 сыворотки молодня ка крупного рогатого скота гипериммунизированного гиподерматозным антигеном и эмбриональную сы воротку крови крупного рогатого скота. Установлено, что при исследовании крови животных спонтанно инвазированных личинками подкожного овода в ИФА было выявлено 18 сывороток крови с превышени ем оптической плотности в 1,49-2,53 раза (больные животные) по сравнению с нормальной сывороткой.

У 58 образцов превышение оптической плотности по сравнению с нормальной сывороткой составило в 1,09-1,41 раза (здоровые животные).

При обследовании животных на наличие клинических признаков заболевания гиподерматозом и сравнении их с данными, полученными при постановке иммуноферментного анализа установлено, Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы что у всех животных, отрицательно реагировавших в ИФА, клинические признаки гиподерматоза выяв лены не были (58 голов), и у всех животных (17 голов), положительно реагировавших в ИФА, при визу альном осмотре были обнаружены гиподерматозные желваки, с интенсивностью инвазии 1-8 личинки на животном.

Таким образом, установлено, что специфичность и чувствительность экспериментального об разца антигена для выявления спонтанно инвазированного личинками подкожного овода крупного ро гатого скота в ИФА при гиподерматозе крупного рогатого скота составила 100%.

Во втором опыте подобрали группу животных в РУСПП ППР «Правда» (121 животное), а также принадлежащих населению в ООО «Торговый Дом «Ждановичи-АГРО» Минского района (23 го ловы). В опыте использовали 144 сыворотки крови от опытных групп животных, в качестве контроля использовали 5 сывороток крови здоровых коров, 3 сыворотки молодняка крупного рогатого скота гипе риммунизированного гиподерматозным антигеном и эмбриональную сыворотку крови крупного рогатого скота. Установлено, что из 121 проб отобранных на РУСПП ППР «Правда» МТФ Тресковщина в ИФА было выявлено 19 сывороток крови с превышением оптической плотности в 1,5-2,92 раза по сравне нию с нормальной сывороткой (больные животные). У 104 образцов превышение оптической плотности по сравнению с нормальной сывороткой составило в 1,02-1,48 раза (здоровые животные). Из 23 проб отобранных у животных принадлежащих населению в ООО «Торговый Дом «Ждановичи-АГРО» в ИФА было выявлено 10 сывороток крови с превышением оптической плотности в 1,5-2,67 раза по сравнению с нормальной сывороткой (больные животные), тогда как, у 13 образцов превышение оптической плот ности по сравнению с нормальной сывороткой составило в 1,08-1,49 раза (здоровые животные).

При обследовании животных на наличие клинических признаков заболевания гиподерматозом и сравнении их с данными, полученными при постановке иммуноферментного анализа, установлено, что у всех животных, отрицательно реагировавших в ИФА, клинические признаки гиподерматоза выяв лены не были (115 голов). При обследовании животных положительно реагировавших в ИФА (29 голов) у 28 животных были выявлены гиподерматозные желваки с интенсивностью инвазии 1-8 личинки на голову, тогда как у одного животного (принадлежащего РУСПП ППР «Правда») клинических признаков гиподерматоза на протяжении всего периода наблюдения выявлено не было.

Таким образом, специфичность во втором опыте составляет 99,13%, чувствительность 96,55% (приложение А).

В третьем опыте подобрали группу из 129 животных на РУСПП ППР «Правда» МТФ «Дули чи» Минского района. Установлено, что при исследовании крови животных спонтанно инвазированных личинками подкожного овода в ИФА было выявлено 11 сывороток крови с превышением оптической плотности в 1,5-2,38 раза по сравнению с нормальной сывороткой (больные животные). У 118 образцов превышение оптической плотности по сравнению с нормальной сывороткой составило в 0,60-1,47 раза (здоровые животные).

При обследовании животных на наличие клинических признаков заболевания гиподерматозом и сравнении их с данными, полученными при постановке иммуноферментного анализа установлено, что у 10 коров (из 11 положительно реагировавших в ИФА) при визуальном осмотре были обнаружены гиподерматозные желваки, с интенсивностью инвазии 1-2 личинки на животном, у остальных 119 живот ных клинические признаки гиподерматоза выявлены не были (118 голов отрицательно реагировавших в ИФА и 1 положительно). Специфичность ИФА при гиподерматозе крупного рогатого скота составляет 99,15%, чувствительность 90,0%.

Анализируя полученные данные по определению диагностической эффективности иммуно ферментного анализа для выявления спонтанно инвазированного личинками подкожного овода круп ного рогатого скота, установлено, что специфичность ИФА составляет 99,43±0,29%, чувствительность 95,52±2,93%.

Заключение.

Специфичность разработанного «Набора для раннего выявления антител к антигенам подкож ных оводов Hyd bv и Hyd lu у крупного рогатого скота методом иммунофермент yd Ветеринарная медицина XXI века: инновации, опыт, проблемы и пути их решения Актуальные проблемы заразных болезней животных, микробиологии, биотехнологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ного анализа «ИФА-гиподерма» составляет 99,43±0,29%, чувствительность 95,52±2,93%.



Pages:     | 1 |   ...   | 8 | 9 || 11 | 12 |
 



 
© 2013 www.libed.ru - «Бесплатная библиотека научно-практических конференций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.