авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ БИБЛИОТЕКА РОССИИ

КОНФЕРЕНЦИИ, КНИГИ, ПОСОБИЯ, НАУЧНЫЕ ИЗДАНИЯ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ


Pages:     | 1 |   ...   | 9 | 10 ||

«УЧРЕЖДЕНИЕ ОБРАЗОВАНИЯ «БЕЛОРУССКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ» СОВЕТ МОЛОДЫХ УЧЕНЫХ МОЛОДЕЖЬ И ИННОВАЦИИ – 2013 ...»

-- [ Страница 11 ] --

с двадцативосьмисуточного по двухмесячный — в 2,0, и 1,9 раза, с двухмесячного по четырехмесячный – 1,6 и 1,1 раза и с четырхмесячного по шестимесячный — 1,6 и 0,6 раза. У помесных поросят масса этой кишки возрастает соответственно – 1,3;

2,2;

1,5;

2,0;

2,1;

1,2 и 1,5 раза, а длина — 0,1;

1,1;

1,2;

0,9;

1,9;

1,0 и 0,8 раза.

Следовательно, наиболее высокие темпы возрастных изменений массы и длины кишок тонкого кишечника у чистопородных и помес ных поросят выявляются в одни и те же их промежутки жизни.

ЛИТЕРАТУРА 1. Джунельбаев, Е. Сравнительная характеристика развития внутренних органов у помесных подсвинков / Е. Джунельбаев, И. Фролова // Свиноводство. – 2005. – №2. – С.

30-31.

2. Киснер, В. А. Динамика массы органов пищеварения и некоторых других внутрен них органов свиней в зависимости от породности и направления продуктивности / А. В.

Киснер, В.Е. Никитченко // Сельскохозяйственная биология. – 1986. - №11. – С. 62-66.

3. Негреева А.Н. Формирование внутренних органов у свиней / А.Н. Негреева, В.А Бабушкин, В.Г. Завьялова// Зоотехния. – 2004. - №5. – 28-30 с.

4. Ткачев, Е.З. Физиология питания свиней/ Е.З. Ткачев.- М.: Колос, 1981. - 239 с.

УДК: 636:612. МАССА И ДЛИНА ТОНКОГО И ТОЛСТОГО КИШЕЧНИКА У ЧИСТОПОРОДНЫХ И ПОМЕСНЫХ ПОРОСЯТ М.Г. ТЕРЕНТЬЕВА, ст. преподаватель ФГБОУ ВПО «Чувашская государственная сельскохозяйственная академия », г. Чебоксары, Россия С целью выяснения особенностей формирования кишечника у свиней в раннем постнатальном периоде нами проведены определение массы и длины тонкого и толстого кишечника у чистопородных и помесных поросят в возрасте 1, 7, 14,21, 28, 60, 120 и 180 суток, выращенных в условиях свинокомплекса ОАО «Вурнарский мясокомбинат» Вурнарского района Чувашской Республики. Помесные поросята получены скрещиванием свиноматок крупно-белой породы с хряками породы дюрок и йоркшир. Животных подбирали по принципу аналогов с учетом клинико-физиологического состояния, возраста и живой массы.

В течение первой недели жизни масса тонкого кишечника (табл. 1) у чистопородных поросят возрастает в 3,6 раза, а длина — в 1,4 раза. К двухнедельному возрасту масса увеличивается на 23,4%, а длина — на 16,4%. В течение последующих семи дней масса повышается в 1, раза, а длина — на 48,3%. К четырхнедельному возрасту масса кишки Международная научно-практическая конференция возрастает на 17,6%, а длина — на 8,4%. Через месяц жизни поросят масса становиться больше в 3,1 раза, а длина — на 40,2%. В последующие два месяца, к четырхмесячному возрасту, масса увеличивается на 82,1%, а длина — на 21,4%. К шестимесячному возрасту масса тонкого отдела кишечника повышается на 12,6%, а длина — на 5,5%. У помесных поросят масса тонкого кишечники возрастает соответственно – 3,2;





1,3;

1,8;

1,2;

3,2;

1,8 и 1,1 раза, а длина — 1,4;

1,2;

1,4;

0,9;

1,4;

1,2 и 0,6 раза.

Та б л и ц а 1. Масса и длина тонкого отдела кишечника у разновозрастных чистопородных и помесных поросят Чистопородные поросята Помесные поросята Возраст, Масса тонкого Длина тонкого Масса тонкого Длина тонкого сут кишечника, г кишечника, см кишечника, г кишечника, см 1 27,43±1,85 414,6±6,3 31,38±2,11 445,5±5,8** 7 99,98±4,99 591,3±5,9 101,30±5,84 602,4±6, 14 123,35±6,55 685,2±6,7 130,99±6,42 712,0±6,8* 21 226,89±10,23 1016,0±8,6 237,37±9,56 1027,7±8, 28 266,75±12,89 1102,3±9,5 280,01±12,97 1115,8±9, 60 838,26±15,46 1545,8±11,4 886,11±16,31 1560,0±12, 120 1526,24±17,45 1876,4±15,8 1581,44±18,53 1894,5±16, 180 1718,74±21,41 1978,8±17,8 1766,01±23,18 2002,5±18, *- p0,05, ** - p0,01, *** - p0,001 – по отношению помесных к чистопородным Следовательно, интенсивность изменений массы тонкого отдела кишечника в разные фазы роста и развития поросят неодинаковая.

Наиболее выраженными темпами масса кишечника у чистопородных и помесных поросят возрастает в фазе с первого по седьмые сутки жизни и с четырхнедельного по двухмесячный возраст. Темпы изменений умеренные в фазе с двухнедельного по трхнедельный и с двухмесячного по четырехмесячный. Небольшая интенсивность возрастных изменений массы кишечника обнаруживается с недельного по двухнедельный, трхнедельного по четырхнедельный и четырхмесячного по шестимесячный возраста. Примерно такая же закономерность изменений выявляется и длины изучаемого органа поросят.

Достоверная разница массы тонкого кишечника между чистопородными и помесными поросятами не выявляется. Длина кишечника достоверно отличается в суточном и двухнедельном возрастах. В суточном возрасте у чистопородных она равна 414,6±6,3, то у помесных поросят она выше на 7,5%, р0,01;

в двухнедельном возрасте масса тонкого отдела кишечника у помесных поросят достоверно больше, чем у чистопородных на 4,0%, р0,05.

Расчты свидетельствуют (табл. 2), что в течение первых семи Молодежь и инновации – суток жизни поросят масса толстого отдела кишечника у чистопородных поросят возрастает в 2,9 раза, а длина – в 1,3 раза. В течение последующих семи суток масса увеличивается на 44,2%, а длина – на 19,4%. К трхнедельному возрасту, масса повышается на 61,9%, а длина – на 15,2%. В последующие семь суток жизни поросят, к четырхнедельному возрасту, масса кишечника увеличивается на 40,1%, длина – на 14,4%. К двухмесячному сроку масса возрастает в 3,3 раза, а длина — на 54,7%. У четырхмесячных поросят масса толстого кишечника выше, чем у двухмесячных в 2,3 раза, а длина – на 50,3%. В течение последующих двух месяцев, к шестимесячному возрасту, масса повышается в 2,6 раза, а длина — 30,5%. У помесных поросят масса кишечника возрастает соответственно – в 2,9;



1,6;

1,5;

1,3;

3,4;

2,3 и 2,6 раза, а длина — в 1,3;

1,2;

1,2;

1,2;

1,6;

1,5 и 1,3 раза.

Та б л и ц а 2. Масса и длина толстого кишечника у разновозрастных чистопородных и помесных поросят Чистопородные поросята Помесные поросята Возраст, Масса толстого Длина толстого Масса толстого Длина толстого сут кишечника, г кишечника, см кишечника, г кишечника, см 1 9,91±0,33 88,3±1,1 10,48±0,42 91,6±2,2* 7 28,39±0,83 119,1±2,6 30,61±0,91 122,7±2, 14 40,94±2,03 142,2±2,5 49,59±2,14 147,4±2, 21 66,30±2,33 163,8±2,6 73,81±2,54 170,5±2, 28 92,90±5,29 187,4±7,6 99,46±6,11 196,7±7, 60 308,51±13,01 308,6±8,4 341,35±14,12 322,6±8, 120 724,22±19,87 463,9±10,3 781,01±18,56 489,6±11, 180 1897,03±25,66 605,3±12,3 1994,91±24,33* 628,4±13, *- p0,05, ** - p0,01, *** - p0,001 – по отношению помесных к чистопородным Следовательно, в разные фазы постнатального периода онтогенеза масса и длина толстой кишки изменяется с неодинаковой интенсивностью. Наиболее существенные возрастные изменения кишечника по массе и у чистопородных, и у помесных выявляются с суточного по семисуточный и с месячного по двухмесячный возраста.

Темпы изменений массы толстого кишечника умеренные в фазе с двухмесячного по четырехмесячный и четырхмесячного по шестимесячный возраста. Небольшая интенсивность возрастных изменений этого показателя определяется с недельного по двухнедельный, двухнедельного по трхнедельный и трхнедельного по четырхнедельный фазы жизни поросят. Примерно такая же закономерность возрастных изменений обнаруживается и по длине толстого кишечника.

Достоверная разница массы толстого отдела кишечника между чистопородными и помесными поросятами определяется в Международная научно-практическая конференция шестимесячном возрасте, масса кишечника у помесных поросят на 5,2% больше, чем у чистопородных, р0,05. Длина кишечника у помесных поросят достоверно выше, чем у чистопородных в суточном возрасте, на 3,7%, р0,05.

Таким образом, полученные результаты исследований свидетельствуют об одинаковом характере и интенсивности возрастных изменений массы и длины тонкого и толстого одтелов кишечника у чистопородных и помесных поросят. Вместе с тем в отдельные возрастные сроки выявляется определенная разница изучаемых показателей между разными группами поросят.

УДК 636.22/.28:611. СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ СЛИЗИСТОЙ ОБОЛОЧКИ СЫЧУГА ТЕЛЯТ ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ ПРЕПАРАТА «ГЕПАВЕКС 200»

Г.А. ТУМИЛОВИЧ, кандидат ветеринарных наук, старший преподаватель УО «Гродненский государственный аграрный университет»

г. Гродно, Республика Беларусь Одним из факторов, сдерживающих развитие молочного скотовод ства, а также других отраслей животноводства является низкая со хранность и качество полученного приплода, во многих случаях обу словленные врожденной гипотрофией [2]. Особенности морфогенеза многокамерного желудка телят с признаками физиологической незре лости в раннем постнатальном онтогенезе является частью данной проблемы. Это необходимо для понимания морфофункциональной организации пищеварительной системы [1].

Цель исследований – изучить структурно-функциональных особен ностей организации слизистой оболочки сычуга месячных телят с при знаками антенатального недоразвития на фоне применения препарата «Гепавекс 200».

Научно-производственные исследования проводились в 2011- гг. на базе УО СПК «Путришки» Гродненского района и СПК «Демб рово» Щучинского района Гродненской области и НИЛ УО «ГГАУ».

Нами был проведен опыт на телятах с признаками антенатального недоразвития с живой массой при рождении 23,8±0,93 кг до 1-го ме сячного возраста. При этом были сформированы 2 группы: опытная и контрольная по 15 голов в каждой группе по принципу аналогов.

Материалом для гистологических исследований служили образцы стенок сычуга у 5 телят месячного возраста с признаками врожденного недоразвития. Материал отбирался в сычуге – по контуру большой кривизны в фундальном и пилорическом отделе. При заборе материала стремились к максимальной стандартизации препаративных процедур Молодежь и инновации – при фиксации, проводке, заливке, приготовлении парафиновых и криостатных срезов. Отбор проб многокамерного желудка проводили не позднее 10-15 мин. после вскрытия брюшной полости животных.

Материал предварительно фиксировался в 10%-ом растворе нейтраль ного формалина и жидкости Карнуа.

Применение препарата «Гепавекс 200» оказало положительное влияние на морфогенез тканевых компонентов стенки сычуга опытных животных. В фундальной зоне сычуга на слизистой оболочке валики имеют ровные края с вершинами округлой формы. Глубина ямок в этой зоне у телят контрольной группы составляет 201,91±5,81 мкм, у телят опытной группы – 126,51±6,09 мкм. Высота поверхностного и ямочного эпителия в фундальном отделе у телят-гипотрофиков опыт ной группы составляет 15,76±0,81 и 16,93±0,59, что 16,94% и 34,25% больше чем у телят-гипотрофиков контрольной группы.

Толщина железистого аппарата фудальных желез телят контроль ной группы составляет 207,18±7,03 мкм, а у телят опытной группы – 320,51±10,61 мкм. Относительная толщина железистого слоя слизи стой оболочки у телят-гипотрофиков опытной группы составила 15,05%, а у телят контрольной группы – 11,46%. У 1-месячных телят гипотрофиков опытной группы фундальные железы сформированы дифференцированными или слабо дифференцированными главными клетками, среди которых встречаются, достаточное количество парие тальных гландулоцитов. Фундальные железы представляют собой вет вящиеся трубочки, соединяющиеся по 2-3 к одной желудочной ямке коротким выводным протоком, чего нельзя отметить у телят кон трольной группы.

При диспепсиях и гастроэнтеритах происходит снижение диффе ренциации клеток, вследствие чего наблюдается прогрессирующее уменьшение количества высокодифференцированных париетальных клеток и нарастающая их дегенерация. Атрофия железистого аппарата происходит за счет того что железы становятся более извилистыми, промежутки между ними увеличиваются за счет разрастания соедини тельной ткани и ее отека. Отмечается увеличение железистых ямок и укорочение секреторного отдела желез. В данном возрасте длина же лез у телят опытной группы составляет 312,09±5,37 мкм, а у телят кон трольной группы она меньше на 15-25%. У 15-20% клеток наблюдают ся многочисленные митозы. У телят опытной группы 80-95% парие тальных клеток являются структурно и функционально сформирован ными, занимают большую часть секреторной трубки.

В состав одной фундальной железы животных контрольной группы может входить 7,99±0,56 париетальных клеток, диаметр которых со ставляет 11,84±0,72 мкм, а у животных опытной группы данные пока затели равны 15,38±0,47 шт. и 13,96±0,54 мкм соответственно. У ново рожденных животных размер париетальных клеток зависит от места Международная научно-практическая конференция расположения. Так в верхней части желез клетки имеют несколько меньшую величину, чем в концевом отделе желез, где расположены самые крупные клетки. В месячном возрасте основная масса парие тальных клеток сосредотачивается в средней части железы.

В пилорической зоне сычуга у 1 месячных телят наибольшая глу бина ямок и толщина железистого слоя. У телят-гипотрофиков кон трольной группы глубина ямок составляет 223,51±5,81 мкм, что на 61,31 мкм больше, чем у телят опытной группы. Наиболее хорошо раз вит поверхностный и ямочный эпителий в пилорическом отделе сычу га у телят опытной группы и составляет 21,04±0,37 мкм и 18,57±0, мкм, а у телят контрольной группы 14,09±0,81 мкм и 12,91±0,63 мкм соответственно.

Толщина железистого слоя слизистой оболочки сычуга у телят гипотрофиков контрольной группы составляет 305,57±11,02 мкм, что на 71,23 мкм меньше, чем у телят-гипотрофиков опытной группы. Же лезистые структуры в пилорическом отделе интенсивно развиваются, увеличивается плотность расположения и длина пилорических желез.

В клетках пилорических желез наблюдаются митозы, особенно этот процесс, выражен у телят контрольной группы, у телят опытной груп пы клеточные элементы более дифференцированы и выражены. Мож но выделить париетальные клетки с завершенной дифференциацией в пилорическом отделе у телят-гипотрофиков. Количество париетальных клеток у животных опытной группы в пилорическом отделе сычуга составило 13,91±0,41 шт., а диаметр 12,91±0,23 мкм, а у животных контрольной группы на 21,06% и 26,81% меньше соответственно. Кле точный состав соединительной ткани разнообразен: ретикулярные, фибробласты, гистиоциты, тучные, плазматические. Диаметр пилори ческих желез у телят-гипотрофиков опытной и контрольной группы составляет 47,11±2,01 мкм и 43,19±3,45. Диаметр пилорических и фундальных желез у животных контрольной группы увеличен на фоне гастроэнтеральной патологии, при которых отмечаются обширные зоны диффузных воспалительных инфильтратов, захватывающих в той или иной степени всю слизистую оболочку, на фоне этого установлено увеличение базальной мембраны сычуга в результате воспалительной реакции, толщина которой доходит до 12-18 мкм.

Таким образом, для эпителиального пласта, железистого аппарата слизистой оболочки сычуга месячных телят характерны: 1) увеличение железистых ямок и укорочение секреторного отдела желез у телят гипотрофиков контрольной группы;

2) диаметр пилорических и фун дальных желез у животных контрольной группы увеличен на фоне гастроэнтеральных диарей, при которых отмечаются обширные зоны диффузных воспалительных инфильтратов, так диаметр пилорических желез у телят-гипотрофиков опытной и контрольной группы составля ет 47,11±2,01 мкм и 43,19±3,45;

Молодежь и инновации – ЛИТЕРАТУРА 1. Микулич, Е.Л. Морфология структур сычуга телят-молочников в норме и патоло гии: автореф. дис. … канд. вет. наук: 16.00.02 /Е.Л.Микулич;

Витеб. гос. акад. вет. мед. – Витебск, 2001. –с. 20.

2. Сорокин, С.П. Патоморфологические изменения при диспепсии телят в зависимо сти от полноценности рационов кормления коров-матерей в период стельности: автореф.

дис. … канд. вет. наук: 16.801 /С.П.Сорокин;

Сарат. зовет. ин-т. –Саратов, 1971. –19 с.

УДК 636.2.053.31:612. СТРУКТУРНО-ФУНКЦИОНАЛЬНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ ВИЛОЧКОВОЙ ЖЕЛЕЗЫ ТЕЛЯТ С РАЗНОЙ СТЕПЕНЬЮ ФИ ЗИОЛОГИЧЕСКОЙ ЗРЕЛОСТИ ПРИ РОЖДЕНИИ Г.А. ТУМИЛОВИЧ, кандидат ветеринарных наук, старший преподаватель УО «Гродненский государственный аграрный университет»

г. Гродно, Республика Беларусь Исследование органов иммунной системы имеет первостепенное значение, так как распознавание и уничтожение инородны субстанций, в большинстве случаев патогенных микробов в организме осуществля ется защитными органами, одним из которых является вилочковая же леза (тимус), роль которого определена как ведущая в формировании клеточного иммунитета, лимфоидной системы и иммунологического статуса организма [2].

На современном этапе развития животноводства в связи с интенси фикацией сельскохозяйственного производства на организм животных воздействуют значительное количество стрессовых факторов (гипоки незия, скученность, перегруппировка, перевозка и т.д.), которые отри цательно сказываются на строении и функции различных систем, в том числе и на лимфоидных органах [1].

Цель работы – изучить морфологические, морфометрические и функциональные особенности вилочковой железы новорожденных телят с различной степенью антенатального недоразвития.

Научно-производственные исследования по решению поставленной цели осуществлялись в 2009-2012 гг. в условиях УО СПК «Путриш ки», СПК «Гродненский» Гродненского района и СПК «Демброво»

Щучинского района Гродненской области и НИЛ УО «ГГАУ». Клини ческие исследования новорожденных телят проводили согласно обще принятому в ветеринарии плану [А.М. Смирнов и др., 1988], а также исходя из нами разработанной методики определения морфофункцио нальной зрелости новорожденных телят [Г.А. Тумилович и др., 2008].

В зависимости от степени антенатального недоразвития новорож денные телята были разделены на четыре группы: телята нормотрофики с живой массой 35,1±1,07 кг, низкая степень антена тального недоразвития – живая масса 30,7±0,81 кг, средняя степень – Международная научно-практическая конференция живая масса 23,8±0,93 кг и высокая степень антенатального недораз вития телят – живая масса 19,2±0,41 кг.

Материалом для морфологических исследований служили образцы вилочковой железы 19 однодневных телят разной степени физиологи ческой зрелости. Материал отбирался в шейном и грудном отделе ви лочковой железы. При заборе материала стремились к максимальной стандартизации препаративных процедур при фиксации, проводке, заливке, приготовлении парафиновых и криостатных срезов. Отбор проб проводили не позднее 10-15 мин. Материал предварительно фик сировался в 8%-ом растворе нейтрального формалина и жидкости Карнуа. Для проведения морфологических исследований применяли окраску гистопрепаратов гематоксилин-эозином. Для обработки дан ных использована система микроскопии с компьютерной обработкой «Биоскан», которая включает микроскоп ЛОМО МИКМЕД – 2, цвет ную фотокамеру D.S.P. 78/73 SERIES.

Вилочковая железа (тимус) новорожденных телят крупного рогато го скота представлена анатомически сформированным органом, состо ящим из двух отделов – грудного и шейного и имеющих светло-серый цвет с розовым оттенком. Грудная доля располагается асимметрично (несколько влево) в переднем средостении и граничит справа с вер хушкой легкого и основанием сердца. Шейная часть состоит из непар ной части, соединяющейся с грудной долей при помощи перешейка.

Гистологически тимус покрыт капсулой, состоит из долек. Для ти муса новорожденных животных телят характерно четкость контуров долек. Дольки железы телят-нормотрофиков и телят-гипотрофиков с низкой степенью недоразвития хорошо оформлены и четко контуриро ваны, в которых различают корковое и мозговое вещество. У телят нормотрофиков и телят-гипотрофиков с низкой степенью недоразви тия отмечено преобладание коркового вещества над мозговым веще ством и составляет 73,8%, 26,2% и 72,1% и 27,9% соответственно, что свидетельствует о высокой активности лимфобластов периферической зоны долек тимуса и цитопоэтической функции железы. Так у телят нормотрофиков толщина коркового слоя составляет 506,96±14,22 мкм, что на 18,7%, 45,9% и 62,4% больше, чем у телят-гипотрофиков с низ кой, средней и высокой степенью недоразвития.

Наибольшая площадь долек выявлена у телят-нормотрофиков и со ставляет 614,86±45,51 мм2. Форма долек разнообразна, округло овальная и овально-вытянутая. Корковое вещество образовано из ре тикулярной ткани, ячейки которой заполнены тимоцитами и лим фобластами. Мозговое вещество представлено особым эпителием, ко торый формирует одноклеточные и слоистые тимусные тельца (тельца Гассаля), выполняющие гормональную функцию. У телят нормотрофиков одноклеточных тимусных телец в мозговом веществе содержится больше, чем у животных других групп. В мозговом веще Молодежь и инновации – стве долек встречаются до 8-10 тимусных телец. Слоистые тимусные тельца Гассаля округлой, вытянутой или овальной формы, величина их значительно варьирует. Тимусные тельца подвергаются базофильной дистрофии, вакуолизации, гиалинозу. Они пиронинофильны и дают положительную шик-реакцию. Среди клеточных элементов наиболь шую часть составляют тимоциты, а так же присутствуют ацидофило циты, в основном вблизи расположения тимусных телец и единичные в соединительнотканных прослойках.

Капсула у телят-гипотрофиков с высокой степенью недоразвития дряблая и толщина составляет 21,11±2,07 мкм, междольковые перего родки расширены, отечны, отчетливо выражена застойная гиперемия, отмечаются кровоизлияния. Толщина междольковых перегородок ва рьирует от 27,31±4,01 до 32,11±4,53 мкм.

В некоторых дольках у телят-гипотрофиков со средней и высокой степенью недоразвития отмечено отсутствие типичного строения. Они однородны, равномерно инфильтрированы лимфоцитами, в них ти мусные тельца отсутствует. Наименьшая толщина мозгового слоя вы явлена у телят-гипотрофиков и равна 326,47±25,58 мкм, что на 7,3%, 4,3% и 27,7% меньше, чем у телят-гипотрофиков со средней и низкой степенью недоразвития и телят-нормотрофиков. Соотношение площа ди коркового и мозгового вещества долек тимуса у телят гипотрофиков со средней и высокой степенью недоразвития составило – 61,7%, 38,3% и 49,9%, 50,1%.

Отмечено уменьшение количества тимоцитов в корковом веществе, за счет чего происходит сужение коркового вещества, основную часть дольки занимает мозговое вещество с очаговым скоплением ацидофи лоцитов в состоянии разрушения на фоне тимоцитолиза. Отмечается миграция лимфоцитов из коркового в мозговой слой (инверсия слоев).

У телят-гипотрофиков одноклеточные тимусные тельца встречаются редко. Отмечаются многослойные тельца Гассаля находящиеся в со стоянии кистозного перерождения. Полости выстланы плоским эпите лием и содержат конгломерат клеток находящихся в состоянии дис трофии.

Таким образом, у новорожднных телят уровень морфологической сформированности тимуса тесно связан со степенью физиологической зрелости при рождении, что проявляется: 1) в соотношении коркового и мозгового слоя долек;

2) деструктивными процессами тканевых ком понентов;

3) активности лимфобластов периферической зоны долек и цитопоэтической функции железы.

ЛИТЕРАТУРА 1. Криштофорова, Б.В. Морфофункциональные особенности новорожденных телят:

учебное пособие / Б.В. Криштофорова, И.В. Хрусталева, Л.Г. Демидчик. Москва: Моск.

вет. акад., 1990. – 88 с.

Международная научно-практическая конференция 2. Фисенко, С.П. Морфологическая характеристика щитовидной железы и тимуса молодняка крупного рогатого скота черно-пестрой породы: автореф.дис. … канд.вет.наук: 16.00.02 / С.П.Фисенко;

Мордов. гос. ун-т. им. Н.П.Огарева. – Саранск, 2009. – 22 с.

УДК 619:616.98:579.887.111-076:636. КОНСТРУИРОВАНИЕ ТЕСТ-СИСТЕМЫ ИФА И ПЦР ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ MYCOPLASMA HYOPNEUMONIAE Т.Ю. ТЯПША, научный сотрудник, А.П. ЛЕМИШ, кандидат ветеринарных наук, зав. отделом молекулярной биологии, РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского», г. Минск, Республика Беларусь В современном условиях производства свинины в первую очередь обращают на качество получаемой продукции. Одной из задач по достижению этой цели является профилактика инфекционных забо леваний, в последние годы преимущественно респираторной этиоло гии, доля которых составляет 30-80%. Поражается, как правило, мо лодняк, что как следствие приводит к снижению качества и себесто имости получаемой продукции [2]. В естественных условиях заболе вания органов дыхания протекают чаще в виде ассоциаций с другими инфекциями: пастереллез, репродуктивно-респираторный синдром свиней, цирковирусная инфекция, энзоотическая (микоплазмозная) пневмония, гемофилезный полисерозит, актинобациллезная плевроп невмония, [2, 5, 3, 4, 6, 8, 9] причем некоторым придается первооче редное значение, так например, бактериальные респираторные пато гены, в зависимости от способности вызывать заболевание, подразде ляют на три группы. В первую группу входят основные (первичные) вдыхаемые бактериальные патогены, при введении которых в трахею поросятам развивается пневмония. Они имеют факторы вирулентно сти, преодолевающие естественную защиту в легких. К этой группе относят наряду с Actinobacillus pleuropneumoniae, Bordetella bronchiseptica и Mycoplasma hyopneumoniae. Вторая группа включает второстепенные (вторичные) вдыхаемые патогены, при введении ко торых в трахею поросятам не развивается пневмония. Для ее разви тия требуются повреждения легких, обусловленные пневмотропными вирусами или микоплазмами. В эту группу входят Pasteurella multo cida, Haemophilus parasuis, Streptococcus suis, Mycoplasma hyorhinis.

Третья группа — бактериальные патогены, переносимые кровью при развитии септицемии. Сюда относят Salmonella choleraesuis, Actino bacillus suis, Actinomyces pyogenes (Arcanobacterium pyogenes) [7, 10, 12].

Таким образом Mycoplasma hyopneumoniae (МН) является глав ным бактериальным патогеном, поражающим респираторный тракт.

Молодежь и инновации – Заболевание, обусловленное МН и второстепенными бактериальны ми патогенами, — энзоотическая пневмония. Поражения легких при этой болезни обнаруживают при убое у 30–80% свиней [11]. МН сама по себе обладает минимальной патогенностью, однако усиливает по ражение легких, вызываемое вирусами.

Несмотря на то, что энзоотическая пневмония поражает, в основ ном, растущих поросят, родительское поголовье также играет важ ную роль в возникновении эпизоотии в хозяйстве. Микоплазма пере дается горизонтальным способом среди поросят, находящихся в од ном помещении или воздушно-капельным путем, но и распространя ется вертикальным способом от свиноматок к потомству в период подсоса. Таким образом, оценка статуса здоровья может помочь нам выбрать наиболее подходящую стратегию контроля энзоотической пневмонии.

Поэтому целью наших исследований – было создание тест систе мы ИФА и ПЦР для диагностики микоплазмоза свиней (Mycoplasma hyopneumoniae инфекции) Две тест-системы дополняют друг друга.

ПЦР позволяет на ранних стадиях обнаруживать возбудителя инфек ции, когда еще иммунный ответ у свиней не развит или в результате свеже занесенной инфекции или в результате иммунодепрессии, ко торую могут вызывать микоплазмы на ранних стадиях инфекции.

Также этот метод можно использовать в неблагополучных хозяй ствах, в которых применяется вакцинация против данной инфекции.

Материалы и методы Mycoplasma hyopneumoniae выращивали на селективной среде для микоплазм.

Приготовление антигена проводили путем осаждения на центри фуге 6000g в течение часа. Антиген отмывали фосфатно-солевым буфером (ФСБ) с pH 7,2 трижды, затем разрушали ультрозвуком (Bandelin sonopuls) в течение 30 минут 35 Кгц (цикл разрушения при данной частоте 3 минуты, 5 минут – охлаждение). Надосадок прове ряли на количество белка по методу Бредфорд. Контрольные сыво ротки получены из хозяйств свиноводческих комплексов Республики Беларусь и исследованы импортным набором (SERELISA® M.hyop) Постановку ИФА проводили путем сенсибилизации плашек антиге ном Mycoplasma hyopneumoniae в дозе 30 мкг на мл. После инкуба ции и трехкратной промывки ФСБ с твином-20 (ФСБ-Т) pH 7,2 вно сили контрольные положительные и отрицательные сыворотки про веренные импортным набором в разведении 1:2. После инкубации и трехкратной промывки плашки ФСБ-Т pH7,2 вносили импортный конъюгат к антигену Mycoplasma hyopneumoniae. После инкубации при комнатной температуре в течение 30 минут плашки трижды от мывали ФСБ-Т pH7,2 и проявляли реакцию ТМБ, после развития цветной реакции в течение 15-20 мин вносили в лунки 10% серную Международная научно-практическая конференция кислоту и учитывали на спектрофотометре АИФ М/340 при длине волны 450 нм.

Полимеразную цепную реакцию проводили в три этапа: выделе ние ДНК, амплификация выделенных фрагментов ДНК, детекция продуктов амплификации в 2% геле агарозы:

Выделение ДНК проводили на миниколонках с использованием хаотропных агентов, различных буферов для отмывки и получения чистых продуктов ДНК не содержащих ингибиторов, способных по мешать прохождению дальнейшей реакции.

Смесь для амплификации включала: 10хПЦР-буфер(Трис HCl, pH 8,0, ЭДТА),Tween 20, MgCl2, dNTP, праймеры F(прямой) mhJ и R mhJ (обратный), способные идентифицировать, Mycoplasma hyopneumoniae, оптимизированы условия проведения ПЦР.

В качестве положительного контрольного образца использовали геном Mycoplasma hyopneumoniae, в качестве отрицательного кон трольного образца использовали miliQ воду.

Амплификацию проводили на амплификаторе Thermal cycler C1000 Biorad (США) Перед амплификацией в реакционную смесь добавляли 2 мкл ДНК, если концентрация ДНК была мала, объем увеличивали до 3 мкл. Амплификацию проводили при следующем температурном режиме: 5 минут – предварительная денатурация при 95оС, 35 циклов амплификации (60 сек денатурации при 94 оС, 60 се кунд отжига праймеров при 58,6 оС, 60 секунд элонгации при 72 оС) и 7 минут заключительной элонгации.

Для оценки эффективности полученной нами тест-системы мы проверили набором SERELISA® M.hyop 380 сывороток полученных на свиноводческих комплексах РБ. При этом 176 сывороток реаги ровали положительно и 204 – отрицательно. По полученным резуль татам мы отобрали 100 положительных и 100 отрицательных сыворо ток и исследовали набором, произведенным нами в условиях РУП «Институт экспериментальной ветеринарии им. С.Н. Вышелесского».

В результате чувствительность нашего набора составила 98% специ фичность 100% В ПЦР при выбранных условиях искомый фрагмент ДНК Mycoplasma hyopneumoniae (458 п.о.) успешно амплифицировался. На успешный синтез необходимого фрагмента-мишени ДНК, свидетель ствующий о наличии в исследуемом образце генома Mycoplasma hyopneumoniae, указывает светящаяся полоса в электрофоретическом геле на уровне длины по маркеру (458 п.о.). Система амплификации была специфична и активна. Специфическая полоса образовалась на уровне 458 п.о. в контрольном образце К+ (Mycoplasma hyopneumoniae КМИЭВ - ) и в пробе №15 СК РБ (смыв из бронхов от животного свинокомплекса, Могилевский р-н) при отсутствие тако вой в отрицательном контроле К-, ДНК E.coli, Salmonella choleraesuis Молодежь и инновации – (S.chol.), Pasteurella multocida (P.m.), парвовируса свиней (PPV), цир ковируса II типа (PCV2), кДНК вируса репродуктивно респираторно го синдрома свиней (RRSS).

Таким образом, разработаны праймеры F mhJ, R mhJ, способные идентифицировать, Mycoplasma hyopneumoniae, оптимизированы условия проведения ПЦР.

Заключение 1. Сконструирована специфичная и чувствительная тест-система по выявлению антител к Mycoplasma hyopneumoniae и представляет твердофазный, непрямой, конкурентный вариант ИФА.

2. Сконструирована специфичная тест-система для детекции ДНК Mycoplasma hyopneumoniae с определением специфических пар нуклеотидов в электрофоретическом геле.

ЛИТЕРАТУРА 1.Апатенко, В.М., Головко, В.А. Основы паразитоценологии//Ветеринарная пато логия. 2005. - № 2. - С. 4-22.

2.Бочев, И. Комплекс респираторных болезней свиней: Обзор// Российский вете ринарный журнал. Сельскохозяйственные животные. 2009. - № 2. — С. 18-20.

3.Волков, И. Аспекты иммунопрофилактики респираторных заболеваний сви ней//Свиноводство. 2004. - № 5. - С. 31.

4. Гаффаров, Х.З., Романов, Е.А. Инфекционные болезни свиней и современные средства борьбы с ними. Казань: РИЦ «Школа»;

ООО «Шестой элемент», 2003. - 200с.

5.Головко, В.А. Основы паразитоценологии//Ветеринарная патология. 2005. - № 2.

- С. 4-22.

6. Гречухин, А.Н. Особенности иммуногенеза свиней/ТПрактик. 2002. - № 9-10.-С.

58-63.

7. Орлянкин, Б. Г. Инфекционные респираторные болезни свиней [Text] / Б. Г. Ор лянкин // Свиноводство. Промышленное и племенное. – май 2009. - С. 35-36.

8. Палунина, В.В. Экспериментальное воспроизведение бронхопневмонии у поро сят// Ветеринария. 2004. - № 5. - С. 22-25.

9. Федоров, Ю.Н. Оценка иммунного статуса и диагностика иммуноде-фицитов у животных//Ветинформ. 2002. - № 2. С. 8-9.

10. Done S.H. Porcine respiratory disease complex (PRDC)// The Pig Journal.-2002. N50.-P.174-196.

11. Stevenson G.W. Bacterial pneumonia in swine//Proc. 15th IPVS Congress.-1998. P.11-20.

12. Thacker E.L. Immunology of the porcine respiratory disease complex//Vet. Clin.

North America: Food Anim. Pract.-2001.-Vol.17.-P.551-565.

УДК 619:616.599. ГОРМОНАЛЬНЫЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ ИЗМЕНЕНИЯ В КРОВИ КОСУЛЬ ПОД ВЛИЯНИЕМ БИОЭЛЕМЕНТОВ Д.Н. ФЕДОТОВ, канд. вет. наук УО «Витебская государственная академия ветеринарной медицины», г. Витебск, Республика Беларусь Международная научно-практическая конференция Микроэлементозы широко распространены среди диких животных, что обусловлено как алиментарным недостатком биоэлементов в окружающей среде (земле, растениях и воде), так и многообразием заболеваний. При этом нарушение обмена веществ, наряду с основны ми причинными факторами, может являться способствующим факто ром развития болезней других систем и органов. Известно, что к нарушениям минерального обмена в большей степени предрасположе ны из диких копытных животных – косули, особенно чаще сеголетки и реже взрослые особи.

Цель работы – изучить влияние препарата «Антианемин Форте» на гормональный статус и биохимические изменения в крови косули ев ропейской.

Исследования проводились в вольере с сеголетками и половозрелы ми особями самок и самцов косуль до 15 особей в условиях ГПУ «Бере зинский биосферный заповедник». Косули в начале опыта были клини чески осмотрены, при помощи промеров была рассчитана живая масса для распределения их по группам, в зависимости от массы тела и воз раста. Препарат «Антианемин Форте» выпаивали в дозе 10 мл/л питье вой воды в течение трех дней. В 1 см3 препарата содержится: 75 мг же леза в виде колодного раствора, 250 мкг наночастиц кобальта в виде коллоидного раствора и 200 мкг меди в виде коллоидного раствора.

Проводили предварительное взятие крови у подопытных групп жи вотных для определения гормонов и биохимических показателей.

На 3, 5, 7 и 14 сутки за животными в вольере вели строгое наблю дение за их клинико-морфологическим статусом (общее состояние, подвижность, аппетит, реакция на внешние раздражители, переноси мость препарата, наличие симптомов, характерных для ЖДА, заболе ваемость, состояние шерстного покрова и слизистых, сохранность и интенсивность роста).

В результате проведенных исследований установлено, что на 7-сутки увеличилась живая масса косуль с 21,5±3,1 кг (до применения препара та) до 22,8±2,8 кг. Уровень общего холестерина в крови снизился с 2,6±0,7 ммоль/л до 2,3±0,7 ммоль/л. Вместе с холестерином снизился и уровень кортизола в крови косуль с 507,9±19,1 нмоль/л до 494,1±20, нмоль/л. Уровень Т3 практически стабилен: на начало опыта 3,0±0, нмоль/л, на конец – 3,1±0,1 нмоль/л. Уровень Т4 повысился в 1,14 раза – с 36,3±7,1 нмоль/л до 41,5±10,1 нмоль/л. Содержание кобальта в крови до и после применения препарат не изменилось и составило соответ ственно 0,2±0,1 мкмоль/л и 0,2±0,1 мкмоль/л. Однако уровень железа увеличился в 1,04 раза – с 16,7±1,3 мкмоль/л до 17,3±1,6 мкмоль/л.

Таким образом, полученные результаты указывают на безопасность применяемого препарата «Антианемин Форте» на организм косуль, который способствует нормализации обменных процессов и профи лактике микроэлементозов.

Молодежь и инновации – УДК 636.2083:611. МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ КОПЫТЦЕВОГО РОГА У КОРОВ ПРИ ПРИВЯЗНОЙ СИСТЕМЕ СОДЕРЖАНИЯ Е.В. ХОВАЙЛО, магистрант УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины», г. Витебск, Республика Беларусь Молочное скотоводство – одна из ведущих отраслей животновод ства в Республике Беларусь. Программа социально-экономического развития Республики Беларусь на 2011-2015 годы предусматривает необходимость специализации скотоводства именно на данном направлении с увеличением поголовья крупного рогатого скота до миллионов особей, а так же проведении реконструкции и технологи ческого переоснащения молочно-товарных ферм [1, 2, 3, 4]. В связи с интенсификацией животноводства, в Республике Беларусь отмечает ся тенденция к росту числа заболеваний копытец у крупного рогато го скота [2]. Ортопедические патологии у коров наносят значительный экономический ущерб хозяйствам, за счет снижения продуктивности (установлено, что при первых признаках деформации копытец от каж дой дойной коровы не дополучают 4% молока [1]), выбраковки боль шого количества больных животных, при чем чаще высокопродуктив ных. Заболеваемость копытец у коров в отдельных хозяйствах доходит до 40-42,5% от общего поголовья, а при выраженной хромоте – от до 50% [1].

Изучение морфологической структуры копытцевого рога здоровых коров и коров с ортопедическими патологиями (язва Рустергольца, пододерматит) при привязном способе содержания.

Работа проводилась в зимне-стойловый период в условиях хозяй ства с привязным содержанием коров, активный моцион отсутствовал.

Лабораторные исследования проводились в НИИ ПВМ и Б УО ВГАВМ, лаборатории световой и электронной микроскопии, лабора тории кафедры патологической анатомии и гистологии.

После проведения ортопедической диспансеризации были сформи рованы по принципу условных аналогов три группы по 10 животных в каждой: группа 1 – здоровые коровы, группа 2 – коровы с язвой Ру стергольца (ЯР), группа 3 – коровы с пододерматитом (ПД).

Для гистологического исследования проводили отбор проб копыт цевого рога в области подошвы у здоровых животных, и на границе патологического процесса и здоровых тканей – у больных коров. Ги стосрезы готовили на криотоме фирмы Microm. Микроскопию приво дили на микроскопе OLIMPUS BX 51. Обработку полученных изобра жений проводили с помощью программ Image Scope M и cellSens Standard. При этом подсчитывали плотность размещения трубочек по Международная научно-практическая конференция дошвенного рога, расстояние между рядами трубочек и расстояние между трубочками в ряду, а так же диаметр трубочек, площадь коры, ядра и выкрошенного ядра.

Из данных, представленных в таблице 1, следует, что плотность раз мещения трубочек в копытцевом роге здоровых коров на 54% и 63% больше, чем у коров с ЯР и ПД соответственно. Отмечено статистически достоверное увеличение расстояния между рядами трубочек, а так же между трубочками в ряду у больных коров, по сравнению со здоровым.

Т а б л и ц а 1. Морфологические показатели копытцевого рога коров (М+m, n=10) Группа 1 Группа 2 Группа Показатели (здоровые) (язва Рустергольца) (пододерматит) Плотность размещения 0,04±0, трубочек, Р1-2***;

0,02±0,009 0,01±0, штук/100 мкм2 Р1-3*** 135,59±28, Расстояние между ряда- 201,13±12, Р1-2***;

272,41±16, ми трубочек, мкм Р2-3*** Р1-3*** Расстояние между тру 157,53±44, бочками 196,22±56,738 219,53±58, Р1-2** в ряду, мкм Примечание: Р1-2 – достоверность различий между группами 1 и 2;

Р1-3 - достоверность различий между группами 1 и 3;

Р2-3 - достоверность различий между группами 2 и 3;

*Р0,05;

**Р0,01;

***Р0,001.

Анализируя данные таблицы 2, можно сказать, что площадь коры и площадь ядра трубочек копытцевого рога здоровых животных больше на 57% и 33%, по сравнению с коровами с ЯР и на 42% и 34% - по сравнению с коровами с ПД, соответственно.

Копытцевый рог у коров с ПД характеризуется увеличением диа метра трубочек на 10% и 48% по сравнению со здоровыми коровами и коровами с ЯР, соответственно.

Т а б л и ц а 2. Морфологические показатели копытцевого рога коров (М+m, n=10) Группа 1 Группа 2 Группа Показатели (здоровые) (язва Рустергольца) (пододерматит) Площадь коры, 500,41±93,802 P1-2*** 285,21±25,734 P2 482,086±60, мкм2 P1-3*** 3*** Площадь ядра, 743,42±51,804 296,18±13,219 734,26±61, мкм Площадь выкрошенного 363,79±70,092 140,69±14,781 451,79±65, ядра, мкм Диаметр трубки, 39,82±4,104 22,88±2,314 43,87±8, мкм Примечание: Р1-2 – достоверность различий между группами 1 и 2;

Р1-3 - достоверность различий между группами 1 и 3;

Р2-3 - достоверность различий между группами 2 и 3;

*Р0,05;

**Р0,01;

***Р0,001.

Молодежь и инновации – Заключение. Учитывая, что структурной морфофункциональной единицей копытцевого рога подошвы является роговая трубочка, из менение ее морфологических параметров напрямую сопряжено с из менением прочностных характеристик данного рога. По сравнению со здоровыми животными, у коров с ЯР и ПД выявлено достоверное уменьшение плотности размещения трубочек, а так же увеличении расстояния между рядами трубочек и между трубочками в ряду. Тру бочки копытцевого рога здоровых животных характеризуются наибольшей площадью коры и наименьшей площадью выкрошенного ядра, по сравнению с больными коровами. При ЯР трубочки мелкие, расположены реже, что вероятно, свидетельствует о регенеративных процессах в дерме копытцевой подошвы. При ПД плотность располо жения трубочек самая низкая, но они крупнее, чем у здоровых коров, деформированы, с выкрошенным ядром, тонкой корой. Крупный раз мер данных трубочек, на наш взгляд, обусловлен разрыхлением коры и ядра, что снижает прочность копытцевого рога.

ЛИТЕРАТУРА 1. Болезни рога - хлопот много / Э. Веремей [и др.] // Белорусское сельское хозяй ство. - 2011. - №11. - С. 54-56.

2.Веремей, Э. И. Распространение и профилактика заболеваний пальцев и копытцев у крупного рогатого скота / Э. И. Веремей, В. А. Журба // Ветеринарная медицина Бела руси. - 2003. - №2. - С. 33-35.


3.Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь. Пер спективы развития агропромышленного комплекса республики на 2011 – 2015 годы / Министерство сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь // Белорус ская нива. – 2010. – С. 7.

УДК 619:614.449.932. ЭФФЕКТИВНОСТЬ ДЕРАТИЗАЦИОННОГО СРЕДСТВА «РАЦИД»

Я.П. ЯРОМЧИК, к. в. н., доцент, П.П. КРАСОЧКО, к. в. н, ассистент УО «Витебская ордена «Знак Почета» государственная академия ветеринарной медицины», г. Витебск, Республика Беларусь Наибольший ущерб животноводству наносят синантропные грызу ны – серая и черная крысы, домовая мышь. Поселяясь в животновод ческих помещениях или вблизи их, крысы и мыши причиняют значи тельный экономический ущерб [1, 3, 4].

В настоящее время для дератизации с использованием химического метода применяют широкий ряд родентицидов острого и кумулятив ного действия, чаще уже в готовом для применения виде – приманок [1, 2, 5, 6].

При частом и длительном применении одних и тех же родентици дов в отравленных приманках у грызунов появляется своеобразное Международная научно-практическая конференция «привыкание» к ним – повышается специфическая устойчивость к ядам. Также вырабатываются условные оборонительно-защитные ре акции, заключающиеся в том, что грызуны быстро начинают распо знавать встречающийся им яд и перестают поедать отравленные при манки с ним. В меньшей степени это касается ядов-антикоагулянтов.

Чтобы не снижать эффективность химического метода, необходимо яды применять в определенной последовательности, соблюдая оче редность. С другой стороны, частое чередование ядов и приманок из скоропортящихся продуктов вызывает настороженность у грызунов, что отрицательно влияет на качество дератизационных работ. В связи с этим в качестве основного средства борьбы необходимо применять долго сохраняющиеся приманки с ядами-антикоагулянтами [1, 2, 5, 6].

Дератизационное средство «Рацид» представляет собой готовую к применению приманку на основе зерна, содержащую в качестве дей ствующего вещества 0,005% производное оксикумарина – бромодиа лон. По внешнему виду представляет собой цельное зерно или смесь цельного и дробленого зерна, которая длительное время может нахо диться в помещениях без каких-либо изменений и потери вкусовых качеств.

Бромодиалон относится к группе антикоагулянтов. Механизм его действия основан на том, что при попадании в организм животного он кумулируется и далее нарушает образование в печени протромбина и других коагулирующих факторов. В результате этого замедляется свертываемость крови, повреждаются стенки капилляров и перифери ческих кровеносных сосудов, и смерть животных наступает от массо вых кровотечений. Гибель грызунов наступает, как правило, на 4- сутки [1, 6].

Целью работы явилось проведение испытания эффективности де ратизационного средства «Рацид», изготовленного ЧТУП «Биовет пром» и примененного в соответствии с временной инструкцией и программой испытаний, утвержденных Департаментом ветеринарного и продовольственного надзора Министерства сельского хозяйства и продовольствия Республики Беларусь.

Производственные испытания средства «Рацид» проводили в усло виях ведения животноводства в ОАО «Возрождение» и ЗАО «Ольгов ское» Витебского района Витебской области, а также в ОАО «Пара хонское» и СПК «Ставокский» Пинского района Брестской области.

Для изучения эффективности средства «Рацид» при дератизационных мероприятиях в животноводческих помещениях для содержания сви ней и крупного рогатого скота, приманка раскладывалась по 100,0 г в специальные коробки в приманочные точки в зависимости от площади помещения. Установлено, что показатель поедаемости приманки в течение 10 дней составил 100%, количество обнаруженных трупов грызунов составило: мышей – от 7 до 12 голов, крыс – от 6 до 9 голов.

Молодежь и инновации – Дератизационное средство «Рацид» хорошо поедаемо грызунами и является эффективным средством для профилактической дератизации животноводческих помещений.

ЛИТЕРАТУРА 1. Бутко, М.П. Основные отечественные дезинфицирующие средства и дератизаци онные препараты, рекомендованные для практического применения в ветеринарии / Бутко М.П., Волковский Г.Д., Кадиров А.Ф. // Проблемы ветеринарной санитарии, гиги ены и экологии. № 2, 2009. – С. 12-13.

2. Инструкция по борьбе с вредителями хлебных запасов. Часть 1. – М., 1992. – 120 с.

3. Кадиров, А.Ф. Дератизация – один из способов профилактики и ликвидации аф риканской чумы свиней / Кадиров А.Ф., Клементьева С.А., Зацепин В.Г. // Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии. № 1-5, 2011. – С. 124-138.

4. Рыльников В.А. Серая крыса (Rattus norvegicus Berkk.). Экологические основы и подходы к управлению численностью / В.А Рыльников. // М.: НЧНОУ "Институт пест менеджмента", 2010. - 367 с.

5. Рыльников В.А. Управление численностью проблемных биологических видов:

Учебное пособие / под ред. В.А. Рыльникова. - М.: Институт пест-менеджмента, 2011. Т.3. Дератизация - 220 с.

6. Яковлев, А.А. Родентициды (Классификация, происхождение, особенности при менения) / А.А. Яковлев, Н.В. Бабич // Рос. акад. с.-х. наук, Всерос. науч.-исслед. ин-т защиты растений, Инновационный центр защиты растений. - Санкт-Петербург: ВИЗР, 2011. - 63 с.

Международная научно-практическая конференция АЛФАВИТНЫЙ УКАЗАТЕЛЬ Алексеева Е.И. Исмагилова Э.Р.

33 Амосова Л.А. Калмыкова А.Ф.

227 Анашкин Е.Е. Камбур М.Д.

177 Андрусевич А.С. Капанский А.А.

284 241, Анищенко Л.А. Кибкало Л.И.

90 Астраханцева О.Г. Кирик И.М.

10 Ашихмина А.А. Кистерная О.С.

180 Барулин Н.В. Климова С.П.

3, 158, 160 Богданова А.А. Кондратенко О.В.

287 Бондарчук Л.В. Конотоп Д.С.

22 Бордунова О.Г. Корзан С.И.

10, 22 Борисевич О.Н. Король Ц.А.

312 Борисов Н.И. Короткевич О.С.

203, 279 Борисовна Г.С. Корякина Л.П.

184 203, Бульченко И.О. Костюченко В.И.

181 Буяров А.В. Краевская Я.А.

13 Василевская О.А. Краевский С.А.

106 220, Василевская С.И. Красникова Е.Л.

133 Великий С.В. Красочко П.А.

155 Вершинина Е.А. Красочко П.П.

269 Волков М.Ю. Крыжская Т.А.

298 Волкова Е.М. Кудрявец Н.И.

292, 295 Волынец А.В. Кузьминский И.И.

114 Врублевский В.А. Кулешова Л.А.

60 Гандюк М.Ю. Курицына М.С.

41 Гарда С.А. Лапа М.А.

200 Глинкова А.М. Лебедева И.А.

95 Головач Т.Н. Лемиш А.П.

5 155, 302, Голодько И.В. Леонович И.С.

16 Голутвина К.А. Ливощенко Е.М.

269 45, Грабенко А.А. Ливощенко Л.П.

195 45, Гришина Д.Ю. Лобанов Ю.В.

198 Гуцол А.В. Лукина Д.В.

140 50, Даниленко С.Г. Лукина О.В.

38, 200 50, Демко Т.И. Люханов М.П.

19 Денисов Р.В. Макаров М.В.

22 Димитриевич Л.Р. Макарова А.В.

25 Дойлидов В.А. Малова В.В.

292, 295 Дремач Г.Э. Маркелова А.В.

246 Дубаневич О.В. Машкин Н.И.

215 Дуктов А.П. Мехтиев С.М.

27, 30 235, Дымар О.В. Мехтиева К.С.

35 235, Дятликова Т.С. Мистейко М.М.

33 Еромасова В.В. Мифтахутдинов А.В 271 Ефимова Е.В. Могутова В.Ф.

35, 273 Жешко Н.В. Мурад Маалуф Т.Б.

206 Жукова Я.Ф. Мусиенко А.В.

8 Заболоцкая А.А. Мухин Н.Н.

298 Заболоцкая Т.В. Нагорная Л.В.

271, 300 Задорова Н.Н. Назаренко С.Н.

65 Змиевская Т.Н. Наличник Х.Я.

98 Зозуля С.В. Науменко О.В.

163, 168 Зубовская И.В. Невская А.А.

227 Молодежь и инновации – Недоризанюк Л.П. Соляник В.А.

8 85, Никитенко И.Г. Сороко О.Л.

254 Николаева Ю.Г. Станишевская О.И.

55 Нискина А.А. Степанищев М.И.

57 Носков В.В. Степанова Т.М.

62 Орлюк Ю.Т. Стоволос Н.Б.

74 Осипович С.С. Стрельченя И.И.

312 Павлова М.А. Сулоев А.М.

65 Панова О.В. Супрун И.А.

67 163, Пашкова Е.С. Суховский Н.А.

60 Пашук Е.В. Ташлицкая А.В.

290 Пепеляева О.П. Терентьева М.Г.

260 314, Петров В.В., Трушников В.В.

266 Петров Н.С. Тумилович Г.А.

276 320, Петров Р.В. Тяпша Т.Ю.

69 Пилюгина Е.С. Урмаев В.Э.

71 Писаренко А.В. Усатенко Н.Ф.

281 38, Пихтирва А.В. Федотов Д.Н.

258 Платонова О.О. Филон А.М.

273 Портной А.И. Хисамов И.Ж.

106 Разумеев О.И. Ховайло Е.В.

76 Раицкий Г.Е. Ховзун Т.В.

134 Рогачев А.Ф. Цыганков Р.М.

212 144, Романова Е.В. Шах А.В.

180 Руколь В.М. Шевашкевич М.А.

177 Руколь О.В. Шевченко А.П.

180 Сай Н.Г. Шелехов Д.В.

312 Салтанов Ю.М. Шендаков А.И.


114 172, Санганаева А.В. Шендакова Т.А.

307 Сарнацкая Р.Р. Шилов Е.Ю.

19 Сафронов С.Л. Щемелева Н.Ю.

117 Семенов В.Г. Юденкова В.В.

273, 276 Семенов С.В. Юрченко Т.П.

212 Сенькина Т.А. Яковчук В.С.

80, 83 Скурихина Л.А. Якубовский М.В.

25 Смирнова М.Ф. Яркаева Э.Р.

57, 62 Соколова Д.Д. Яромчик Я.П.

71 Соловьев А.В. Яськова Е.В.

266 Соляник А.А. 85, Международная научно-практическая конференция СОДЕРЖАНИЕ РАЗДЕЛ Технологии производства и переработки продукции животноводства Селекция, биотехнология и ветеринарная медицина Барулин Н.В., Юрченко Т.П. Инновационные методы и технологии развития аквакультуры в регионе балтийского моря……………………………………………… Головач Т.Н. Цистеиновые протеазы: возможность использования при получении гидролизатов сывороточных белков……………………………………………………... Жукова Я.Ф., Король Ц.А., Недоризанюк Л.П., Малова В.В. Влияние бактери альных препаратов на реологические свойства мягких сыров c белой плесенью……. Астраханцева О.Г., Бордунова О.Г. Изменения газопроницаемости скорлупы яиц кур разных пород в технологии «Искусственная кутикула» (Аrticle)…………………. Буяров А.В., Мухин Н.Н., Яськова Е.В. Эффективность различных технологий содержания цыплят-бройлеров…………………………………………………………... Голодько И.В. Этологические реакции коров и индексная оценка комфортности при беспривязно-боксовом содержании…………………………………………………. Демко Т.И., Сарнацкая Р.Р. Влияние консервантов-обогатителей на качество си лоса и продуктивность коров…………………………………………………………....... Денисов Р.В., Бордунова О.Г., Бондарчук Л.В. Метод экспресс-анализа липидной фракции биологических жидкостей и тканей на основе масс-спектрометрии………... Димитриевич Л.Р., Степанова Т.М., Скурихина Л.А. Изучение зависимости динамической вязкости и размера частиц жиро-растительных смесей от содержания растительного сырья и условий проведения эксперимента…………………………….. Дуктов А.П., Красочко П.А. Состояние микрофлоры пищеварительного тракта цыплят-бройлеров при использовании биодобавки «Хитозан»………………………... Кондратенко О.В., Дуктов А.П. Особенности кормления осетровых……………….. Дятликова Т.С., Алексеева Е.И. Организация работы поии-клуба «ТУУТАРИ ПАРК» в условиях Северо-запада России……………………………………………….. Ефимова Е.В., Дымар О.В. Микропартикулированные сывороточные белки в обезжиренных молочных продуктах…………………………………………………….. Крыжская Т.А., Даниленко С.Г., Усатенко Н.Ф. Поваренная соль, как барьер безопасности при изготовлении цельномышечных продуктов из мяса птицы……….. Кудрявец Н.И., Гандюк М.Ю. Основные слагаемые успеха в яичном производ стве…………………………………………………………………………………………. Ливощенко Л.П., Ливощенко Е.М. Эпизоотический мониторинг лептоспироза сельскохозяйственных животных в Сумской области………………………………….. Лукина Д.В., Лукина О.В. Закономерность прироста биомассы в процессе активи рования бродильных процессов хлебопекарных дрожжей……………………………... Лукина Д.В., Лукина О.В. Разработка и составление технологической схемы теп ловой обработки хлебопекарных дрожжей в непрерывном режиме…………………... Машкин Н.И., Могутова В.Ф., Николаева Ю.Г. разработка технологии кисломо лочного напитка «Даринка»………………………………………………………………. Нискина А.А., Смирнова М.Ф. Выращивание ремонтных телок айрширской поро ды в условиях Ленинградской области…………………………………………………... Пашкова Е.С., Врублевский В.А., Корзан С.И. Новые виды продукции для дет ского питания на основе инновационных технологий………………………………….. Носков В.В., Смирнова М.Ф. Производственная оценка герефордского скота в условиях Ленинградской области………………………………………………………... Павлова М.А., Задорова Н.Н. Опыт применения голодной диеты при откорме свиней………………………………………………………………………………………. Панова О.В. Эстонская порода перепелов: динамика живой массы………………...... Петров Р.В. Безопасность и качество мяса толстолобиков и карпов при аэромонозе. Молодежь и инновации – Пилюгина Е.С., Соколова Д.Д., Кибкало Л.И. Влияние рациона питания на мяс ную продуктивность бычков…………………………………………………………….... Орлюк Ю.Т., Калмыкова А.Ф. Посолка термокислотного сыра…………………….. Разумеев О.И. Замена кормовым антибиотикам, в свиноводстве, пробиотиками…… Шевченко А.П. Оценка морфологических свойств вымени коров-первотелок укра инской черно-пестрой молочной породы………………………………………………... Сенькина Т.А. Мясные полуфабрикаты функционального назначения……………… Сенькина Т.А. Вареные колбасные изделия с использованием сыворотки молочной подсырной………………………………………………………………………………….. Соляник А.А., Соляник В.А. Интенсивность роста и сохранность поросят при применении брудеров……………………………………………………………………... Соляник А.А., Соляник В.А. Физиологическое состояние поросят при применении брудеров……………………………………………………………………………………. Анищенко Л.А. Типологические особенности современных лошадей русской тяже ловозной породы…………………………………………………………………………... Ташлицкая А.В. Влияние ферментного препарата на продуктивность и выход про дуктов убоя цыплят-бройлеров кросса кобб-500………………………………………... Глинкова А.М. Качество говядины выращиваемого молодняка крупного рогатого скота на рационах с раскисленной казеиновой сывороткой…………………………… Усатенко Н.Ф., Змиевская Т.Н. Влияние технологических факторов на когезион ную и адгезионную способность мяса цыплят-бройлеров……………………………... Урмаев В.Э. Развитие рыбного хозяйства Республики Бурятия на основе кластерного подхода………………………………………………………………………. Кулешова Л.А. Влияние толщины скорлупы и формы перепелиных яиц на потерю их массы при хранении…………………………………………………………………… Василевская О.А., Портной А.И. К вопросу возможности использования в корм лении телят нетоварного молока: физико-химические свойства………………………. Шевашкевич М.А. Сравнительная характеристика биофизических показателей качесва яиц пород и породных групп кур в ФГУП «Генофонд» Россельхозакадемии. Лебедева И.А., Невская А.А. Использование пробиотиков – эффективная коррек ция обменных процессов в организме цыплят-бройлеров……………………………... Салтанов Ю.М., Волынец А.В. Перспективы акклиматизации высокопродуктив ных видов рыб чира (Сoregonus nasus) и пелчира в озере Бобрица Лепельского района………………………………………………………………………………………. Трушников В.В., Сафронов С.Л. Пути повышения продуктивности абердин ангусского скота в ОАО ПЗ «Спутник» Ленинградской области……………………… Степанищев М.И. Исследование процесса вызревания сыра печерський…………… Сулоев А.М. Оценка быков-производителей герефордской породы по качеству потомства в Ленинградской области…………………………………………………….. Камбур М.Д., Ливощенко Е.М., Ливощенко Л.П. Влияние температуры на неко торые показатели сыворотки крови индеек……………………………………………... Яковчук В.С. Выращивание ягнят в подсосный период при использовании пробио тика «Субалин»……………………………………………………………………………. Стоволос Н.Б., Филон А.М. Экономическое обоснование использования в живот новодстве отходов производства биодизеля и переработки моллюсков……………… Василевская С.И., Кирик И.М. Исследование процесса инфракрасного нагрева изделий из куриного фарша………………………………………………………………. Леонович И.С., Раицкий Г.Е. Оборудование кондиционирования сушильного агента на распылительных сушильных установках…………………………………….. Шилов Е.Ю., Сороко О.Л. Экспериментальная установка для изучения процесса термообработки в кольцевом канале……………………………………………………... Яркаева Э.Р., Шелехов Д.В. Эффективность получения прополиса различными способами………………………………………………………………………………….. Маркелова А.В., Гуцол А.В. Использование кукурузного силоса в смеси с капуст ными культурами в рационах коров…………………………………………………….... Международная научно-практическая конференция Цыганков Р.М. Плотности посадки щуки, как добавочного объекта при выращива нии ее в поликультуре…………………………………………………………………….. Цыганков Р.М. Щука, биология и промысел…………………………………………... Шах А.В., Ховзун Т.В., Лобанов Ю.В. Санитарная обработка воздуховодов мясопе рерабатывающих предприятий…………………………………………………………… Великий С.В., Лемиш А.П. Проблемы определения вирусных заболеваний птиц и использование метода ПЦР в их диагностике…………………………………………... Барулин Н.В. Активность аминотрансфераз в сыворотке крови осетрообазных рыб в условиях аквакультуры………………………………………………………………….. Барулин Н.В. Ультразвуковая диагностика пола осетровых рыб в условиях аква культуры……………………………………………………………………………………. Супрун И.А., Зозуля С.В. Характеристика экстерьера кобыл орловской рысистой породы……………………………………………………………………………………… Супрун И.А., Зозуля С.В. Сравнительный анализ резвости в семействах лошадей орловской рысистой породы……………………………………………………………… Шендаков А.

И., Шендакова Т.А., Климова С.П. Влияние вариантов подбора на селекционные признаки чрно-пстрого скота………………………………………….. Шендаков А.И. Генетико-статистические закономерности в локальных популяциях свиней………………………………………………………………………………………. Анашкин Е.Е., Руколь В.М. Мониторинг и пути снижениятравматизма крупного рогатого cкота…………………………………………………………………………….... Ашихмина А.А., Руколь О.В., Романова Е.В. Морфологические изменения кожи собак при экзематозном поражении в эритематозной стадии………………………….. Бульченко И.О. Генетический груз популяций разных видов домашней птицы отряда курообразные……………………………………………………………………… Борисовна Г.С. Этиологическая структура массовых инфекционных болезней телят……………………………………………………………………………………….... Кузьминский И.И. Влияние ассоциативных стронгилятозов желудочно-кишечного тракта на показатели иммунитета крупного рогатого скота…………………………… Исмагилова Э.Р., Хисамов И.Ж. Влияние микроэлементов на миелопероксидаз ную активность овец романовской породы…………………………………………….... Макарова А.В. Выведение новой породы кур во ФГУП «Генофонд»………………... Грабенко А.А. Интенсификация воспроизводительной функции свиноматок после отъема поросят…………………………………………………………………………….. Гришина Д.Ю. Морфология печени бройлеров кросса Flex в возрастном аспекте…. Даниленко С.Г., Гарда С.А. Пробиотический препарат для птицы………………….. Корякина Л.П., Борисов Н.И. Влияние экологических факторов на морфофизио логический статус молочных коров……………………………………………………… Жешко Н.В. Профилактика маститов коров в сухостойный период………………….. Кистерная О.С., Мусиенко А.В. Препарат ПДЕ как непрямой фактор коррекции патогенеза заболеваний медоносных пчел………………………………………………. Конотоп Д.С., Семенов С.В. Определение биологической резистентности к бета лактамным антибиотикам у крупного рогатого скота и свиней………………………... Дубаневич О.В. Определение сорбционной способности гидрата окиси алюминия для изготовления инактивированной вакцины против вирусной диареи крупного рогатого скота…………………………………………………………………………….... Костюченко В.И. Технологические аспекты задержания последа у свиноматок……. Краевский С.А. Физико-механические свойства шовных материалов после имплан тации в подкожную клетчатку КРС……………………………………………………… Краевская Я.А., Краевский С.А. Мониторинг кормов на содержание микромицет и микотоксинов……………………………………………………………………………. Красникова Е.Л. Диагностика репродуктивно-респираторного синдрома свиней….. Амосова Л.А., Зубовская И.В. Оценка иммуногенных свойств вакцины «Пнев мобакт» в лабораторных условиях……………………………………………………….. Молодежь и инновации – Лапа М.А., Станишевская О.И. Способ оценки племенных кур по величине желт ка без повреждения яйца………………………………………………………………….. Люханов М.П., Короткевич О.С. Однонуклеотидный полиморфизм гена tnf- у крупного рогатого скота черно-пестрой породы………………………………………... Мехтиева К.С., Мехтиев С.М. Влияние живой массы телок при рождении на их последующий рост и молочную продуктивность……………………………………….. Мехтиев С.М., Мехтиева К.С. Молочная продуктивность у голштинизированных коров разных линий……………………………………………………………………….. Мифтахутдинов А.В. Неинвазивный метод диагностики состояния стресса у кур…. Капанский А.А. Эффективность применения новых ферментных препаратов в кормлении телят………………………………………………………………………. Капанский А.А., Стрельченя И.И. Новые энтеросорбенты в рыбоводстве………… Мурад Маалуф Т.Б., Дремач Г.Э. Контроль качества препарата Флоравит ВБФ….. Нагорная Л.В. Изучение влияния температурных параметров в птичниках на раз витие клеща Dermanyssus gallinae....................................................................................... Наличник Х.Я. Эпизоотический анализ звероводства львовской области по ассоци ативным инвазиям пушных зверей……………………………………………………….. Никитенко И.Г. Микроморфометрические изменения в периферических органах системы иммунитета свиней, вакцинированных против лептоспироза……………….. Пихтирва А.В. О методиках определения типов высшей нервной деятельности у свиней………………………………………………………………………………………. Якубовский М.В., Щемелева Н.Ю., Пепеляева О.П. Современные средства тера пии и профилактики криптоспоридиоза телят…………………………………………... Назаренко С.Н. Преимущества внедрения системы насср на рыбоперерабатывающих предприятиях……………………………………………………………………………………… Соловьев А.В., Петров В.В., Терапевтическая эффективность нового отечествен ного комплексного противоэндометритного препарата………………………………... Вершинина Е.А., Юденкова В.В., Голутвина К.А. Лечебная эффективность фето плацентарных фракций в ветеринарном акушерстве…………………………………… Еромасова В.В., Заболоцкая Т.В. Оптимизация получения готовых форм препара тов…………………………………………………………………………………………... Ефимова Е.В., Платонова О.О., Семенов В.Г. К проблеме реализации воспроиз водительных и продуктивных качеств свиней…………………………………………... Петров Н.С., Семенов В.Г. Стимуляция неспецифической устойчивости телят при адаптивной технологии выращивания…………………………………………………… Борисов Н.И. Возрастные особенности морфологических свойств вымени коров холмогорской породы……………………………………………………………………... Писаренко А.В. Длительность хозяйственного использования и пожизненная про дуктивность коров красной степной породы……………………………………………. Андрусевич А.С. Лабораторные исследования вакцины против пастереллеза и сальмонеллеза пушных зверей…………………………………………………………… Богданова А.А., Суховский Н.А. Технология производства суспензии микроводо росли штамма Ифр № с-111 в условиях животноводческих комплексов……………... Пашук Е.В. Развитие молочнокислых бактерий в комбинированной молочно растительной среде………………………………………………………………………... Волкова Е.М., Дойлидов В.А. Репродуктивные качества свиноматок при трехпо родном скрещивании скрещивании……………………………………………………… Волкова Е.М., Дойлидов В.А. Мясные качества молодняка свиней с разной пред убойной массой при определении прибором рiglog 105……………………………….. Заболоцкая А.А., Волков М.Ю. Определение оптимальной дозы дезинфицирующего средства для аэрозольного применения………………………….. Курицына М.С., Заболоцкая Т.В. Изучение токсичности препарата токсибиовит на лабораторных животных………………………………………………………………. Международная научно-практическая конференция Мистейко М.М., Лемиш А.П. Обеспечение микробиологической безопасности продуктов животноводства путем разработки и внедрения современного метода молекулярно-генетического анализа……………………………………………………... Корякина Л.П., Макаров М.В. Влияние условий содержания на морфофизиоло гический статус завозного скота…………………………………………………………. Санганаева А.В. Влияние степени инбридинга на фенотипические признаки лошадей владимирской породы…………………………………………………………... Науменко О.В. Фаги Streptococcus thermophilus, выделенные на молочных предприятиях Украины……………………………………………………………………. Осипович С.С., Сай Н.Г., Борисевич О.Н. Культивирование вируса классической чумы свиней на культуре клеток…………………………………………………………. Терентьева М.Г. Влияние трхпородного скрещивания на морфометрические показатели кишок тонкого кишечника поросят…………………………………………. Терентьева М.Г. Масса и длина тонкого и толстого кишечника у чистопородных и помесных поросят…………………………………………………………………………. Тумилович Г.А. Структурно-функциональная организация слизистой оболочки сычуга телят при использовании препарата «Гепавекс 200»…………………………... Тумилович Г.А. Структурно-функциональная организация вилочковой железы телят с разной степенью физиологической зрелости при рождении…………………... Тяпша Т.Ю., Лемиш А.П. Конструирование тест-системы ИФА и ПЦР для диа гностики Mycoplasma hyopneumoniae………………………………………………..…... Федотов Д.Н. Гормональные и биохимические изменения в крови косуль под влия нием биоэлементов………………………………………………………………………... Ховайло Е.В. Морфологические показатели копытцевого рога у коров при привяз ной системе содержания………………………………………………………………….. Яромчик Я.П., Красочко П.П. Эффективность дератизационного средства «Рацид»…………………………………………………………………………………….. Научное издание Редакционная коллегия А.П. Курдеко (гл. редактор), Н.И. Гавриченко (зам. гл. редактора), А.Н. Иванистов (отв. секретарь), В.П. Дуктов, А.С. Мастеров, Н.В. Барулин, Д.Н. Прокопенко, И.Л. Подшиваленко, М.В. Лысенкова Коллектив авторов МОЛОДЕЖЬ И ИННОВАЦИИ – Материалы международной научно-практической конференции молодых ученых (г. Горки, 29–31 мая 2013 г.) В 4-х частях. Часть Компьютерная верстка: Н.М. Таткина Подписано в печать 17.05.2013.

Формат 60 90 1/16. Бумага для множительных аппаратов.

Печать ризографическая. Гарнитура «Таймс».

Усл. печ. л. 25,69. Уч.-изд. л. 25,88.

Тираж 100 экз. Заказ. Цена 56950 руб.

Отпечатано в отделе издания учебно-методической литературы, ризографии и художественно-оформительской деятельности БГСХА 213407, Могилевская обл., г. Горки, ул. Мичурина,

Pages:     | 1 |   ...   | 9 | 10 ||
 



Похожие работы:





 
© 2013 www.libed.ru - «Бесплатная библиотека научно-практических конференций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.